Грибы в самарской области 2018: В Самарской области грибники открыли сезон «тихой охоты» | 63.ru

Содержание

Пошли ли грибы в самарской области 2018

В лесах Самарской области грибы «пошли» в Красном Яре, Новом Буяне, Бинарадке, Кирилловке, Малой Малышевке и других поселениях.

В социальных сетях местные жители делятся фотографиями своих находок. Среди них не только маслята и свинушки, но и подосиновики с подберезовиками.

По словам опытных грибников, такое раннее начало сезона произошло из-за сильной жары и ливней, после которых пришло похолодание.

Большой грибной сезон еще не начался, но пасмурный август порадовал любителей «тихой охоты». Уже сейчас можно набрать грибов на границе Самарской и Ульяновской областей, в Шигонском, Кинельском районах. Расскажем о традиционных грибных местах.

Около Самары

В Самарской области множество мест, где можно набрать разнообразные виды грибов. Например, недалеко от Самары это село Ширяево. Там в районе Ширяевского оврага можно найти много опят. А в сосновых посадках – рыжики. На Грушинской поляне спрятались вдоль проток белянки. А в селе Красный Яр – грузди и сыроежки. Также можно доехать в поселок Прибрежный. Там можно отыскать опята, грузди и лисички.

По области

Опытные грибники называют самым хорошим местом – Бузулукский бор на границе с Оренбургской областью. Там можно найти все виды грибов: белые, вешенки, сморчки, опята.

В селе Новый Буян в Красноярском районе растут опята, рядовки и свинушки. В этом же районе богато на грибы село Молгачи. Очень много рыжиков в сосновом бору у села Малая Малышевка Кинельского района. Также там можно найти подберезовики и черные грузди. Рыжики «обитают» и в сосновых борах в районе сел Старая Рачейка и Смолькино на границе с Ульяновской областью. В окрестностях деревни Орловка в Кошкинском районе растут подосиновики, подберезовики, сыроежки и свинухи. На опята богат Шигонский район.

Как не отравиться

— Собирайте грибы вдали от дорог, магистралей, в экологически чистых районах.

— Собирайте грибы в плетёные корзины — так они дольше будут свежими.

— Собирайте только хорошо знакомые виды грибов.

— Срезайте каждый гриб с целой ножкой.

— Не пробуйте грибы во время сбора

Все принесенные домой грибы в тот же день нужно перебрать, отсортировать по видам и вновь тщательно пересмотреть. Выкидывайте все червивые, перезревшие, пластинчатые грибы, грибы без ножек, дряблые грибы, а также несъедобные и ядовитые, если их всё-таки по ошибке собрали. Грибы обязательно нужно приготовить в день сбора, при этом каждый вид готовить отдельно.

Название: Опята
Тип: Съедобный

Опята – это полезный и вкусный продукт. Растут они во многих регионах России. В Самарской области их собирают на лесных опушках, рядом с поваленными деревьями, на песчаной и черноземной почве. Каждый год сроки созревания меняются. Когда появятся опята в Самаре 2019 года, в основном зависит от погодных условий. В регионе известны места, где ежегодно появляется много грибов.

Виды съедобных опят в Самаре и области

Опята – это пластинчатые грибы, которые растут в лесах, на лугах и пастбищах. Они имеют небольшие размеры, часто появляются большими группами. Шляпки их размером до 8 см, полушаровидные или плоские. Ножки – тонкие, высокие, достигающие 2 – 10 см.

В Самарской области собирают следующим виды опят:

  1. Весенний. Отличается небольшой шляпкой величиной от 1 до 7 см. Ее выпуклая форма с возрастом становится плоской. Красновато-коричневый цвет постепенно выгорает до оранжевого или желтого.
  2. Летний. Это некрупные представители группы с размерами шляпок от 3 до 6 см. Их форма выпуклая, окраска – коричневая или желтоватая. Мякоть – тонкая, бежевого оттенка. Вкус – мягкий, приятный.
  3. Луговой. Разновидность отличается гладкой шаровидной или выпуклой шляпкой. Ножка у представителей вида тонкая, высокая, цилиндрическая. Мякоть – беловатая, имеет сладковатый легкий привкус. Запах напоминает гвоздику.
  4. Осенний. Грибы с выпуклой шляпкой размером от 3 до 15 см имеют окраску от коричневой до зеленоватой. Ножка у них длинная, сплошная, немного расширенная у основания. Мякоть – плотная, беловатая, имеет приятный вкус и запах.
  5. Зимний. Появляется этот вид поздней осенью. Шляпка его крупная, размером до 10 см. Ножка – длинная, плотная. Мякоть – тонкая, с приятным вкусом.

Где растут опята в Самарской области

Опята предпочитают сырые места и легкую полутень. Не обязательно пробираться за ними в чащу леса. Грибница появляется на окраинах поселков, рядом с лесными дорогами и тропинками, у берегов рек и ручьев. В Самарской области этим требованиям соответствуют разные районы.

Лесные массивы, где растут опята в Самаре и Самарской области

Для «тихой охоты» отправляются в смешанные и лиственные леса. Грибница развивается на поваленных деревьях и пнях. Гниющая древесина становится для нее источником питания. Обычно большое скопление грибов наблюдается рядом с березой, дубом, буком, осиной.

Сегодня собирать опята в Самарской области можно в лесных массивах. Одно из наиболее популярных мест – это Спиридоновский лес, неподалеку от села Малая Малышевка. В этом районе также находят сморчки и вешенки. Из-за высокой влажности в районе много комаров, поэтому с собой обязательно берут средства защиты. Доехать до Спиридоновского леса можно на автобусе, который следует до села Богатое.

Добраться до лесных массивов удобнее на личном автомобиле, электричке или автобусе. Опытным грибникам хорошо знакомы леса, где растут опята:

  • березовые посадки в селе Ширяево;
  • вырубки и поляны рядом с селом Пискалы;
  • сосновый лес в Борском районе;
  • Бузулукский бор, где встречаются разные виды грибов.

Грибные места, где можно набрать опят в Самарской области

На территории Самарской области имеется множество грибных мест. Это небольшие участки рядом с населенными пунктами, где наблюдается обильное плодоношение опят. Они расположены рядом с лесами, санаториями, ручьями и реками. О многих местах хорошо известно грибникам.

В Самарской области опята собирают в следующих местах:

  1. Поселок Мехзавод. Один из самых простых и доступных мест. Добраться до него можно на городских автобусах или электричке.
  2. Санаторий Волжский утес. Располагается он в Шигонском районе, куда добираются на такси или личном автомобиле. Въезд на территорию учреждения разрешен только тем, кто имеет путевки. Машину можно оставить неподалеку и отправиться за опятами.
  3. Поселок Управленческий. В Самарской области осенние опята и другие грибы растут совсем рядом в небольшой роще.
  4. Поселок Курумоч. До населенного пункта добираются на электричке.
  5. Кошкинский район. К этой местности ходит автобус по маршруту Самара – Нурлат. Рекомендуется выходить на остановке в деревне Новая Жизнь.
  6. Село Старай Бинарадка. Добраться до грибных мест удобнее на автобусе.
  7. Село Заборовка. Находится в Сызранском районе.

Когда можно собирать опята в Самарской области в 2019 году

Традиционно сезон сбора начинается в конце мая. Плодовые тела появляются группами, с периодичностью в несколько недель. Сезон продолжается вплоть до ноября и первых заморозков.

Когда можно собирать весенние опята в Самарской области

Первые весенние грибы собирают уже в конце мая. Они растут небольшими группами на гниющих остатках деревьев и подстилке. Пик плодоношения приходится на июнь и июль.

Когда пойдут летние опята в Самаре и области

В Самаре летние опята в 2019 году появились уже в июне. Однако сезон их сбора продолжается до октября. Самые большие урожаи наблюдаются в июле и августе.

Когда можно собирать осенние опята в Самарской области в 2019 году

Осенние разновидности собирают уже со второй половины лета. Сезон продолжается до конца осени. Собирать опята в Самаре лучше в конце августа, когда созревает их основная масса. В остальное время плодоношение не такое обильное.

Сезон сбора зимних опят в Самаре и области в 2019 году

Зимние разновидности можно видеть поздней осенью. Сообщения о том, что в Самарской области пошли опята, появляются в конце октября и ноябре. Плодовые тела можно собирать до первого снега. В теплую зиму плодоношение длится в течение всей зимы.

Правила сбора

Для сбора опят потребуется корзина. Не рекомендуется использовать полиэтиленовые пакеты: в них грибная масса быстро нагреваются и сминаются. Ножки осторожно срезают ножом под корень. Не рекомендуется рвать их, поскольку так легко повреждается грибница. После сбора продукт не хранят долго, а обрабатывают в течение 12 часов.

Как узнать, пошли ли опята в Самарской области

Активный рост грибов происходит в тепле и при высокой влажности. Если весна и лето засушливые, то вероятность их появления низкая.

Для роста опят необходимы определенные условия:

  • температура летом +23 °С, весной и осенью – +12 °С;
  • влажность – от 50 до 65%;
  • хорошая аэрация почвы;
  • отсутствие заморозков, засухи, сильных температурных колебаний.

О том, что в Самарской области появились осенние опята, можно судить по карте осадков. После дождя плодовые тела вырастают в течение суток на 1 – 2 см. Поэтому лучше всего отправляться за ними после теплых дождей. В засуху проверяют места рядом с водоемами и реками. На таких участках влага дольше остается в почве, что благоприятно для роста грибов.

Заключение

Когда появятся опята в Самаре 2019 года, зависит от ряда факторов. Сезон сбора грибов начинается со второй половины лета и продолжается до осени. Сначала проверяют грибные места. Отдельное внимание уделяют опушкам, вырубкам, лесным просекам. Грибной сезон открывается в теплую погоду, после дождя.

Оцените статью: Поделитесь с друзьями!

Администрация городского округа Жигулевск — Осторожно, грибы!

Тяжелее всего отравление грибами переносят люди с ослабленным здоровьем и дети. В детском организме ещё нет необходимого количества ферментов для их переваривания. Именно поэтому не рекомендуется кормить любыми грибами детей до 14 лет, и именно поэтому они тяжело переносят отравление.

По данным лечебных учреждений, именно осенью, в грибной сезон, учащаются случаи отравления грибами среди детей. Обычно это происходит во время прогулок, из-за невнимательности взрослых и неосторожности малышей, тянущих в рот сырой гриб.

Но в грибной сезон травятся не только дети, но и взрослые. Чтобы избежать неприятных последствий, важно соблюдать меры предосторожности.

 

Почему мы травимся?

Ежегодно в России регистрируются случаи пищевых отравлений, связанные с употреблением грибов. Грибы являются трудноперевариваемым продуктом, в них много грибной клетчатки — хитина, который не только не переваривается, но и затрудняет доступ к перевариваемым веществам пищеварительным сокам.

Соблюдайте условия хранения грибов и правила приготовления грибных блюд. Любые виды грибов нужно варить в хорошо подсоленной воде, которую после отваривания сливают.

Грибные белки в основном труднорастворимые, что отрицательно сказывается на процессе пищеварения. Поэтому блюда из грибов рекомендуются абсолютно здоровым людям, не страдающим заболеваниями пищеварительного тракта.

 

Следите за детьми!

Важно предупредить ситуации, когда ребёнок может съесть сырой гриб. Для этого нужно ещё заранее, перед прогулкой, осматривать место, где ребёнок будет гулять. Также нужно осматривать территорию детских яслей и садов, школ и других учреждений.

Кроме этого, необходимо внимательно следить за детьми во время прогулки, особенно в парках, скверах, на детских площадках и в лесу.

 

Правила грибника:

Чтобы предупредить отравление грибами, важно соблюдать меры предосторожности, в частности:

Собирайте грибы вдали от дорог, магистралей, вне населённых мест, в экологически чистых районах.

Собирайте грибы в плетёные корзины — так они дольше будут свежими.

Собирайте только хорошо знакомые виды грибов.

Срезайте каждый гриб с целой ножкой.

Все принесённые домой грибы в тот же день нужно перебрать, отсортировать по видам и вновь тщательно пересмотреть. Выкидывайте все червивые, перезревшие, пластинчатые грибы, грибы без ножек, дряблые грибы, а также несъедобные и ядовитые, если их всё-таки по ошибке собрали.

Обязательно нужно подвергнуть грибы кулинарной обработке в день сбора, при этом каждый вид грибов готовить отдельно.

 

Чтобы избежать отравления грибами, помните, что нельзя:

собирать грибы в вёдра, полиэтиленовые пакеты или мешки — это приводит к порче грибов;

собирать старые, переросшие, червивые и неизвестные грибы;

пробовать грибы во время сбора;

подвергать грибы кулинарной обработке через день и более после сбора;

мариновать или солить грибы в оцинкованной посуде и глиняной глазурованной посуде;

хранить грибы в тепле — это скоропортящийся продукт.

 

Советы покупателям

Если вы покупаете уже собранные грибы, помните, что нельзя покупать сушёные, солёные, маринованные и консервированные грибы у случайных лиц и в местах несанкционированной торговли.

Не рекомендуется покупать свежие или сушёные грибы в местах стихийной торговли или покупать грибные консервы в банках с закатанными крышками, приготовленные в домашних условиях.

На рынках и ярмарках к продаже грибы непромышленного производства допускаются только после проведения экспертизы, которая проводится для контроля качества поступающих в продажу продуктов.

Экспертиза призвана определить качество грибов, их целостность, содержание радионуклидов. Только после проведения экспертизы выдаётся разрешение на реализацию продукции .

Если вы покупаете уже собранные грибы в магазинах и супермаркетах, внимательно рассматривайте упаковку с грибами, они не должны быть загнившими или испорченными. Не покупайте грибы, если нарушена целостность упаковки или упаковка грязная. Также не покупайте грибы, если на упаковке нет этикетки, листов-вкладышей и вообще отсутствует информация о товаре.

 

Заготовка грибов

Занимаясь заготовками грибов, необходимо помнить, что существует перечень съедобных грибов. Из большой группы съедобных грибов только белый гриб, груздь настоящий, рыжик обыкновенный являются безусловно съедобными грибами. Только эти грибы можно использовать для приготовления грибных блюд без предварительного отваривания.

Одной из главных причин возникновения пищевого отравления является неправильная технология приготовления грибов. Чтобы обезвредить условно съедобные грибы, нужно их специальным образом обработать — очистить от земли, хорошо промыть в воде, а затем отмочить или отварить. В процессе обработки ядовитые вещества удаляются из плодового тела гриба — только после этого можно грибы использовать для приготовления грибных блюд.

 

О списке видов растений, исключенных из второго издания Красной книги Самарской области Текст научной статьи по специальности «Биологические науки»

Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии.

2018. — Т. 27, № 4(1). — С. 246-252.

УДК 581.9 DOI: 10.24411/2073-1035-2018-10121

О СПИСКЕ ВИДОВ РАСТЕНИЙ, ИСКЛЮЧЕННЫХ ИЗ ВТОРОГО ИЗДАНИЯ КРАСНОЙ КНИГИ САМАРСКОЙ ОБЛАСТИ

© 2018 Н.С. Ильина

Самарский государственный социально-педагогический университет, г. Самара (Россия)

Поступила 23.05.2018

В статье указано мнение автора об исключении некоторых видов растений из списка охраняемых на территории Самарской области.

Ключевые слова: редкие виды, Красная книга, Самарская область.

Ilyina N.S. On the list of plant species excluded from the second edition of the Red Data Book of the Samara Region. — The author’s opinion on the exclusion of certain plant species from the list of protected plants on the territory of the Samara region is indicated in the article. Key words: rare species, Red book, Samara Region.

Вопросы создания и ведения Красной книги Самарской области активно и, на наш взгляд, плодотворно решаются ботаниками региона (Саксонов, Розенберг, 2000; Саксонов, 2001, 2003, 2007, 2015; Шаронова, Ильина, 2006; Саксонов и др., 2007 а, б, 2008, 2016, 2017; Красная книга…, 2007; Конева и др., 2009; Корчиков и др., 2009; Саксонов, Сенатор, 2010, 2012; Тара-нова, Саксонов, 2010; Ильина В.Н. и др., 2012; Князев, 2012; Сенатор и др., 2012; Щербаков, 2013; Ильина, 2014а, 2015а; Корчиков, 2014; Плаксина, 2014; Плаксина и др., 2014; Сенатор, Саксонов, 2014; Бирюкова и др., 2017). Начиная с 90-х годов 20 столетия проводится анализ имеющихся сведений по распространению редких растений (Ильина, Митрошенкова, 2017 а, б), а также изучению их биологических и экологических особенностей (Родионова, 2000, 2003, 2015, 2016; Ильина, 2006, 2007, 2010, 2013а, б, 2014б, 2015 а-ж, 2017а-х, 2018а-в; Ильина и др., 2006; Ильина, Козяева, 2009; Ильина, Дорогова, 2012 а, б; Родионова, Ильина, 2013; Абрамова и др., 2016; Зенкина, Ильина, 2017).

Вышедшая в свет Красная книга Самарской области (Бирюкова и др., 2017) включает 223 вида покрытосеменных растений. Однако список видов, исключенных по разным причинам из охраняемого списка, внушителен — 64 вида цвет-

Ильина Нина Сергеевна, кандидат биологических наук, доцент, [email protected]

ковых растений. Однако, не со всеми «исключениями» стоит согласиться.

Например, во втором издании Красной книги региона указано, что Allium caspicum (Pall.) M. Bieb. для Самарской области указан, по-видимому, ошибочно вместо Allium tulipifolium Ledeb. Отметим, что сборы данного вида подтверждались нами в 1982-2000 гг. Популяции вида имели низкую численность особей. Однако более поздних находок вида никем из исследователей сделано не было 9или же данные отсутствуют в публикациях). Считаю преждевременным исключение Allium capsicum из списка охраняемых видов. Вероятно, во втором издании Красной книги следовало бы остановиться на категории 0 («Вероятно исчезнувшие»), а поиск сохранившихся местообитаний данного представителя следует продолжить.

Также из Красной книги Самарской области были исключены Ceratophyllum submersum L., Ceratophyllum tanaiticum Sapjeg., Elatine hydropiper L., Sparganium minimum Wallr. в связи с тем, что реальная охрана их как водных видов не может быть организована. В свете последних тенденций, свидетельствующих о необходимости охраны р. Волги и других водных комплексов, такое несоответствие позиций бросается в глаза своей недальновидностью. Реальная охрана водных объектов, без сомнения, должна быть предложена и реализована. В сложившейся ситуации многие ограничения по использованию акватории по причине искусственного отсутствия ред-

ких видов растений могут быть сняты, что повлечет за собой усугубление негативной экологической ситуации на водных объектах Самарской области.

Наряду с водными видами, во втором издании Красной книги Самарской области значительно ущемлены и степные представители. Среди них Aster alpinus L., Galatella angustissima (Tausch) Novopokr., Jurinea multiflora (L.) B. Fedtsch., Tanacetum sclerophyllum (Krasch.) Tzvel., Otites baschkirorum (Janisch.) Holub [Silene baschkirorum Janisch.]. Указано лишь, что данные виды нуждаются в особом внимании к их состоянию и мониторинге. Реальное состояние природоохранного дела в регионе свидетельствует, что даже включенные в список охраняемых виды в реальных ситуациях подвергаются уничтожению. Проведенные самарскими ботаниками исследования биологии, экологии и структуры ценопо-пуляций указанных выше и некоторых других видов подтверждают необходимость их реальной охраны.

Например, В.Н. Ильиной (2015а, в) указано, что Galatella angustissima в стрессовых условиях (перевыпас, пожоги) популяции стареющие нормальные неполночленные с прерывистым одновершинным правосторонним спектром с максимумом на старовозрастных генеративных растениях (27%). Значителен вклад зрелых генеративных растений (25%), особи генеративного периода онтогенеза составляют 68% от общей численности. В спектре отсутствуют проростки и юве-нильные растения. Более чем в три раза увеличивается процент сенильных особей — с 3 до 11%.

У Gentiana pneumonanthe в стрессовых условиях (перевыпас, сенокошение) популяции горечавки переходят в стареющие нормальные не-полночленные с прерывистым одновершинным правосторонним спектром с максимумом на старовозрастных генеративных растениях (около 40%). Генеративные особи в сумме составляют также около 75% популяции. Не зарегистрированы проростки и ювенильные экземпляры (Ильина, 2015 а, в).

У Jurinea multiflora даже в оптимальных условиях отмечены стареющие нормальные неполно-членные популяции с прерывистым одновершинным правосторонним спектром с максимумом на старовозрастных генеративных растениях (30%). Доля генеративных растений составляет 67%. Отсутствует сенильная онтогенетическая группа особей. При существенном воздействии антропогенных факторов они являются также стареющими нормальными неполночленными с прерывистым одновершинным правосторонним спектром с максимумом на старовозрастных генеративных растениях (около 39%). При полном отсутствии возобновления популяциях (нет особей предгенеративного периода), ее составляет в основном генеративная группа растений — 83%. Сенильная фракция возрастает с 4 до 17% (Ильина, 2015 а, в).

Данные наблюдений за Aster alpinus в составе каменистых сообществ указывают на снижение всех основных популяционных параметров во всех изученных местообитаниях. Установлено, что площадь модельных популяций сократилась более чем на 25%, плотность особей в сообществе упала примерно на 20-23%, доля генеративных особей возросла на 20-25%. Причиной такого катастрофического снижения площади популяций, входящих в их состав особей, неуклонного старения популяций при низких показателях самовосстановления является хозяйственная деятельность человека (перевыпас скота, частые нерегламентируемые пожоги, сбор на букеты) (Ильина, 2013б).

Без сомнения, все эти виды преждевременно были исключены из списка охраняемых на территории Самарской области. Как показывает опыт самарских исследователей (Родионова, 2000, 2003, 2015, 2016; Ильина, 2006, 2007, 2010, 2013 а, б, 2014б, 2015 а-ж, 2017 а-х, 2018 а-в и др.), изучение биоэкологических особенностей редких растений может предложить в качестве результатов оригинальные многоаспектные данные, которые, без сомнения, должны быть использованы при ведении региональной Красной книги.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Абрамова Л.М., Ильина В.Н., Каримова О.А., Мустафина А.Н. Сравнительный анализ структуры популяций Hedysarum grandiflorum (Fabaceae) в Самарской области и Республике Башкортостан // Растительные ресурсы. 2016. Т.

52, № 2. С. 225-239.

Бирюкова Е.Г., Богданова Я.А., Буркова

Т.Н. и др. Красная книга Самарской области. Т. I. Редкие виды растений и грибов / под редакцией

С.А. Сенатора, С.В. Саксонова. Самара, 2017. (Изд. 2-е, перераб. и доп.). 384 с.

Зенкина Т.Е., Ильина В.Н. Особенности структуры ценопопуляций полыни солянковид-ной (Artemisia salsoloides Willd., Asteraceae) в Самарской области // Самар. науч. вестн. 2017. Т. 6, № 4 (21). С. 41-47.

Ильина В.Н. Эколого-биологические особенности и структура ценопопуляций редких видов рода Hedysarum L. в условиях бассейна Средней Волги. Автореф. дис…. канд. биол. наук. Тольятти: ИЭВБ РАН, 2006. 19 с.

Ильина В.Н. Современное состояние популяций копеечников в бассейне Средней Волги // Самарская Лука: Бюл. 2007. Т. 16, № 1-2 (19-20). С. 235-240.

Ильина В.Н. К вопросу о видовом составе растений, включенных в Красную книгу Самарской области // Биоразнообразие растительного мира. Екатеринбург: УрО РАН, 2010. С. 126-128.

Ильина В.Н. Особенности погодичной и сезонной динамики онтогенетической структуры популяций копеечника крупноцветкового // Раритеты флоры Волжского бассейна: доклады участников II Рос. науч. конф. (г. Тольятти, 11-13 сентября 2012 г.) / под ред. С.В. Саксонова и С.А. Сенатора. Тольятти: Кассандра, 2012. С. 109-110.

Ильина В.Н. О биоэкологических особенностях копеечника крупноцветкового (Hedysarum grandiflorum Pall., Fabaceae) в Самарской области // Самар. науч. вестн. 2013а. № 4. С. 78-80.

Ильина В.Н. Структура и динамика популяций редких растений каменистых степей в условиях лесостепной зоны на примере Aster alpinus L. // Лесостепь восточной Европы: структура, динамика и охрана: сб. статей Междунар. Науч. Конф., посв. 140-летию со дня рождения И.И. Спрыгина (г. Пенза, 10-13 июня 2013 г.). Пенза: ПГУ, 2013б. С. 80-81.

Ильина В.Н. Определение природоохранного статуса редких видов растений Красной книги Самарской области (второе издание) на основе особенностей их онтогенеза и популяционной структуры // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2014а. Т. 8, № 4. С. 98-113.

Ильина В.Н. Структура и состояние популяций средневолжских видов рода Hedysarum L. (Fabaceae) // Самар. науч. вестн. 2014б. № 2 (7). C. 37-40.

Ильина В.Н. Ведение Красной книги Самарской области: к определению природоохранного статуса редких видов растений // Структурно-функциональная организация и динамика расти-

тельного покрова: материалы II Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием, посвящ. 80-летию со дня рождения д.б.н., проф. В.И. Матвеева, 30-31 января 2015 года, Самара. Самара: ПГСГА, 2015а. С. 131-137.

Ильина В.Н. Демографическая структура ценопопуляций Oxytropis spicata (Pall.) O. et B. Fedtsch. (Fabaceae) // Изв. Самар. НЦ РАН. 20156. Т. 17, № 4(1). С. 98-104.

Ильина В.Н. Изменения базовых онтогенетических спектров популяций некоторых редких видов растений Самарской области при антропогенной нагрузке на местообитания // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2015в. Т. 24, № 3. С. 144-170.

Ильина В.Н. Основные итоги изучения онтогенеза и структуры популяций модельных видов Hedysarum L. и Oxytropis DC. // Вестн. молодых ученых и специалистов Самарского гос. ун-та. 2015г. № 1 (6). С. 9-15.

Ильина В.Н. Особенности структуры ценопопуляций Oxytropis floribunda (Pall.) DC. (Fabaceae) в Самарской области // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2015д. Т. IX, № 1. С. 156-170.

Ильина В.Н. Особенности ценопопуляций копеечников в условиях хозяйственной эксплуатации экосистем // Актуальные вопросы вузовской науки. Вып. 10. Самара, 2015е. С. 182-189.

Ильина В.Н. Популяционно-

онтогенетическое направление в рамках научной школы «Растительный покров долинно-водосборных геосистем бассейна Средней Волги (КГПИ, СГПУ, ПГСГА) // История ботаники в России. К 100-летнему юбилею РБО. Сб. статей Междунар. науч. конф. Тольятти, 14-17 сентября 2015 г. Т. 2. Ботанические научные школы и лидеры. Тольятти: Кассандра, 2015ж. С. 171-177.

Ильина В.Н. Демографические характеристики популяций остролодочника яркоцветного (Ox-ytropis floribunda (Pall.) DC., Fabaceae) в Самарской области // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2017а. Т. XI, № 3. С. 120-127.

Ильина В.Н. Демографическая характеристика ценопопуляций астрагала рогоплодного (Astragalus cornutus Pall., Fabaceae) в Самарской области // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2017б. Т. 26, № 1. С. 85-98.

Ильина В.Н. Динамика ценопопуляций полыни солянковидной (Artemisia salsoloides Willd., Asteraceae) в Самарской области // Ботанический вестн. Северного Кавказа. 2017в. № 1. С. 11-16.

Ильина В.Н. К вопросу об онтогенетической структуре популяций Cephalaria uralensis (Murr.) Schrad. ex Roem. et Schult. в Самарской области // Проблемы изучения и сохранения растительного мира Евразии: Материалы II Всерос. конференции с междунар. участием, посвящ. памяти Л.В. Бардунова (1932-2008 гг.) (Иркутск, Кырен, 1115 сентября 2017 г.). Иркутск: Издательство Института географии им. В.Б. Сочавы СО РАН, 2017г. С. 149-151.

Ильина В.Н. Об экологических особенностях Astragalus cornutus Pall. (Fabaceae) на организ-менном и популяционном уровнях // II Межвузовская научно-практическая конференция «Фармацевтическая ботаника: современность и перспективы», (Самара, 07 октября 2017 г.): Сборник материалов / под редакцией академика Европейской Академии естественных наук, заслуженного работника высшей школы Российской Федерации, доктора фармацевтических наук, профессора В.А. Куркина. Самара: ФГБОУ ВО СамГМУ Минздрава России, 2017д. С. 6-11.

Ильина В.Н. Онтогенез и динамика популяций остролодочника колосистого (Oxytropis spicata (Pall.) O. et B. Fedtsch., Fabaceae) в Самарской области // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2017е. Т. 26, № 2. С. 101-114.

Ильина В.Н. Онтогенетическая структура популяций Atraphaxis frutescens (L.) C. Koch (Poly-gonaceae) вблизи северной границы ареала (Самарская область) // Вестн. Удм. ун-та. Сер. Биология. Науки о Земле. 2017ж. Т. 27, № 3. С. 271277.

Ильина В.Н. Онтогенетическая структура це-нотических популяций полыни солянковидной (Artemisia salsoloides Willd., Asteraceae) в Самарской области // Биоразнообразие и антропогенная трансформация природных экосистем : материалы Всерос. науч.-практ. конф., посвящ. памяти А. И. Золотухина и Году экологии (г. Балашов, 1819 мая 2017 г.) / под ред. А. Н. Володченко. Саратов: Саратовский источник, 2017з. С. 80-83.

Ильина В.Н. Особенности онтогенетической структуры природных ценопопуляций люцерны решетчатой (Medicago cancellata Bieb., Fabaceae) в Самарском Заволжье // Самар. науч. вестн. 2017и. Т. 6, № 2 (19). С. 46-51.

Ильина В.Н. Особенности популяционной структуры астрагала украинского в Самарской области // Сборник трудов шестого международного экологического конгресса (восьмой международной научно-технической конференции)

«Экология и безопасность жизнедеятельности промышленно-транспортных комплексов ELPIT 2017, 20-24 сентября 2017 г., гг. Самара — Тольятти, Россия: Издательство «ELPIT». Отпечатано в АНО «Издательство СНЦ». 2017к. Т. 4, Научный симпозиум «Экологический мониторинг про-мышленно-транспортных комплексов». С. 72-76.

Ильина В.Н. Особенности природных популяций Cephalaria uralensis (Murr.) Schrad. ex Roem. et Schult. (Dipsacaceae) // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2017л. Т. 26. № 4. С. 147-163.

Ильина В.Н. Особенности структуры популяций и распространение Polygala sibirica L. (Polygalaceae) в Самарской области // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2017м. Т. 26, № 3. С. 193-203.

Ильина В.Н. Распространение и особенности структуры ценопопуляций астрагала бороздчатого (Astragalus sulcatus L., Fabaceae) в Самарской области // Экологический сборник 6: Труды молодых ученых Поволжья. Международная молодежная научная конференция / Под ред. канд. биол. наук С.А. Сенатора, О.В. Мухортовой и проф. С.В. Саксонова. Тольятти: ИЭВБ РАН, «Кассандра», 2017н. С. 172-174.

Ильина В.Н. Состояние и структура ценопопуляций Anthemis trotzkiana Claus в Самарской области // Проблемы популяционной биологии: материалы XII Всерос. популяционного семинара памяти Николая Васильевича Глотова (1939— 2016), Йошкар-Ола, 11-14 апреля 2017 г. Йошкар-Ола, 2017о.С. 110-112.

Ильина В.Н. Состояние и типы ценопопуля-ций Oxytropis hippolyti Boriss. (Fabaceae) в Самарской области // Актуальные вопросы экологии и природопользования: сборник трудов Всероссийской научно-практической конференции, посвященной памяти член-корреспондента АН РБ, доктора биологических наук, профессора Миркина Бориса Михайловича. Ч. I. Уфа: РИЦ БашГУ, 2017п. C. 288-291.

Ильина В.Н. Структура популяций Astragalus sulcatus L. (Fabaceae) // European Journal of Natural History. 2017р. № 4. С. 62-64.

Ильина В.Н. Состояние природных популяций некоторых редких видов растений сем. Fabaceae в Самарской области // Актуальные проблемы экологии и природопользования в современных условиях: Материалы Междунар. науч.-практ. конференции, 5-7 декабря 2017 г. Часть 1. Киров: Вятская ГСХА, 2017с. С. 178181.

Ильина В.Н. Структура ценопопуляций астрагала бороздчатого (Astragalus sulcatus L., Fabaceae) в Самарской области // Охрана природы и региональное развитие: гармония и конфликты (к Году экологии в России): материалы междунар. науч.-практ. конф. и школы-семинара молодых ученых-степеведов «Геоэкологические проблемы степных регионов», проведённых в рамках XXI сессии Объединенного научного совета по фундаментальным географическим проблемам при Международной ассоциации академий наук (МААН) и Научного совета РАН по фундаментальным географическим проблемам, п. Партизанский Бузулукского района Оренбургской области, 01-05 октября 2017 года. Т. I. [Текст]: сб. науч. тр. Оренбург: Институт степи УрО РАН, 2017т. С. 286-290.

Ильина В.Н. Структура ценопопуляций Ajuga chia Schreb. (Lamiaceae) в Самарской области // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2017у. Т. XI, № 1. С. 84-88.

Ильина В.Н. Типы и состояние популяций Astragalus sulcatus L. (Fabaceae) в Самарской области // Изв. Оренбург. гос. аграрного ун-та. 2017ф. № 6(68). С. 63-65.

Ильина В.Н. Типы популяций некоторых редких видов растений Самарской области в стрессовых условиях среды // Трешниковские чтения — 2017: Современная географическая картина мира и технологии географического образования: Материалы VII Всерос. научно-практической конференции. Ульяновск: ФГБОУ ВО «УлГПУ им. И.Н. Ульянова», 2017х. С.133-135.

Ильина В. Н. Онтогенетическая структура и типы ценопопуляций лазурника трехлопастного (Laser trilobum (L.) Borkh.) в бассейне Средней Волги // Вес. Нац. акад. навук Беларусь Сер. бiял. навук. 2018а. Т. 63, № 1. С. 110-117.

Ильина В.Н. Онтогенетическая структура популяций пальчатокоренника мясо-красного (Dac-tylorhiza incarnata (L.) Soo, Orchidaceae) в Самарской области // Эколого-географические проблемы регионов России: материалы IX всероссийской научно-практической конференции с международным участием, посвящённой 100-летию со дня рождения к.г.н., доцента Алексея Степановича Захарова. 15 января 2018 г., г. Самара / отв. ред. И.В. Казанцев. Самара: СГСПУ, 2018б. С. 59-62.

Ильина В.Н. Распространение и особенности структуры популяций Laser trilobum (L.) Borkh. (Apiaceae) в Самарской области // Структурно-

функциональная организация и динамика растительного покрова: материалы III Всерос. науч.-практич. конф., посвящ. 70-летию Самарского отделения Русского ботанического общества, 1921 января 2018 года, Самара. Самара: СГСПУ, 2018в. С. 128-134.

Ильина В.Н., Булыгина Е.В., Высотина Е.С. Биологические особенности копеечника крупноцветкового на ранних этапах онтогенеза // Вестн. СГПУ. Исследования в области естественных наук и образования: Сб. науч. тр. Вып. 5. Самара, Изд-во СГПУ, 2006. С. 29-34.

Ильина В.Н., Дорогова Ю.А. К вопросу об экологических условиях местообитаний копеечника Гмелина (Hedysarum gmelinii Ledeb.j // Структурно-функциональная организация и динамика растительного покрова: материалы Все-росс. научно-практ. конф. с международ. участием, посв. 100-летию со дня рождения д.б.н., проф. В.Е. Тимофеева. 1-3 февраля 2012 г., Самара. Самара: ПГСГА, 2012а. С. 121-124.

Ильина В.Н., Дорогова Ю.А. О положении ценопопуляций копеечника Гмелина (Hedysarum gmelinii Ledeb.) в экологическом пространстве (в условиях бассейна Средней Волги) // Изв. Самар. НЦ РАН. 2012б. Т. 14, № 1(7). С. 1745-1749.

Ильина В.Н., Ильина Н.С., Митрошенкова А.Е., Устинова А.А. Ко второму изданию Красной книги Самарской области // Изв. Самар. НЦ РАН. 2012. Т. 14, № 1(7). С. 1742-1744.

Ильина В.Н., Козяева Е.В. Особенности структуры популяций копеечников Гмелина (Hedysarum gmelinii Ledeb.) и крупноцветкового (H. grandiflorum Pall.) в окрестностях с. Челно-Вершины (Челно-Вершинский район Самарской области) // Экологический сборник 2: Тр. молодых ученых Поволжья / Под ред. проф. С.В. Саксонова. Тольятти: ИЭВБ РАН, 2009. С. 75-78.

Ильина В.Н., Митрошенкова А.Е. Распространение и особенности структуры популяций астрагала рогоплодного (Astragalus cornutus Pall., Fabaceae) в Самарской области // Природное наследие России: сб. науч. статей Междунар. науч. конф., посвящ. 100-летию нац. заповедного дела и Году экологии в России (г. Пенза, 23-25 мая 2017 г.) / под ред. д-ра биол. наук, проф. Л.А. Новиковой. Пенза: Изд-во ПГУ, 2017а. С. 153155.

Ильина В.Н., Митрошенкова А.Е. Распространение Hedysarum gmelinii Ledeb., H. grandiflorum Pall. и H. razoumovianum Fisch. et Helm (Fabaceae) в Самарской области // Самарская Лу-

ка: проблемы региональной и глобальной экологии. 2017б. Т. 26, № 3. С. 204-213.

Князев М.С. Предложения к новому изданию Красной книги Самарской области // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2012. Т. 21, № 4. С. 111-123.

Конева Н.В., Сенатор С.А., Саксонов С.В. Вся Красная книга Самарской области: растения лишайники, грибы. Тольятти: Кассандра, 2009. 272 с.

Корчиков Е.С. Предложения к проекту второго издания Красной книги Самарской области: лишайники, мохообразные и сосудистые растения // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2014. Т. 23, № 4. С. 105118.

Корчиков Е.С., Макарова Ю.В., Прохорова Н.В., Матвеев Н.М., Плаксина Т.И. Предложения к Красной книге Самарской области // Раритеты флоры Волжского бассейна: Сб. докладов Всерос. науч. конф. Тольятти: Кассандра, 2009. С. 90-96.

Красная книга Самарской области: Растения / Под ред. Г.С. Розенберга и С.В. Саксонова. Тольятти: ИЭВБ РАН, 2007. 372 с.

Плаксина Т.И. Дополнения и изменения ко второму проекту Красной книги Самарской области // Изв. Самар. НЦ РАН. 2014. Т. 16, № 1(4). С. 1246-1249.

Плаксина Т.И., Калашникова О.В., Корчиков Е.С. и др. Новые и редкие таксоны растений для Красной книги Самарской области // Экология и география растений и сообществ Среднего Поволжья / Под ред. С.А. Сенатора, С.В. Саксо-нова, Г.С. Розенберга. Тольятти: Кассандра, 2014. С. 319-326.

Родионова Г.Н. Структура и динамика цено-популяций некоторых эндемичных астрагалов бассейна Средней Волги: автореф. дис. … канд. биол. наук. Воронеж, 2000. 22 с.

Родионова Г.Н. Пространственная структура ценопопуляций эндемичных астрагалов // Исследования в области биологии и методики ее преподавания: межвузовский сб. науч. тр. Самарский гос. пед. ун-т. 2003. С. 266-273.

Родионова Г.Н. Состояние ценопопуляций некоторых раритетных видов памятника природы «Зеленая гора» Елховского района Самарской области // Структурно-функциональная организация и динамика растительного покрова материалы II всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участием, посвящ. 80-летию со дня рождения д.б.н., проф. В.И. Матвеева. 2015. С. 194-199.

Родионова Г.Н. Динамические закономерности онтогенетической структуры ценопопуляций некоторых раритетных видов горы Зелёная (Ел-ховский район Самарской области) // Биоэкологическое краеведение: мировые, российские и региональные проблемы Материалы 5-й международной научно-практической конференции, посвящённой 110-летию со дня рождения доктора биологических наук, профессора Л.В. Ворже-вой и 125-летию со дня рождения кандидата педагогических наук, доцента Г.Г. Штехера. Ответственный редактор С.И. Павлов. 2016. С. 100107.

Родионова Г.Н., Ильина В.Н. Популяцион-ные стратегии жизни избранных полукустарничков сем. Бобовые (БаЬаееае) в условиях антропогенного пресса // Изв. Самар. НЦ РАН. Т. 15, № 3(2), 2013. С. 776-778.

Саксонов С.В. Конференции и совещания по подготовке Красной книги Самарской области (1998-1999 гг.) // Самарская Лука: Бюл. 2001. № 11. С. 375-388.

Саксонов С.В. Растения Красной книги Самарской области: квалификация статуса редкости // Институту экологии Волжского бассейна РАН 20 лет: Основные итоги и перспективы научных исследований / Отв. ред. Г.С. Розенберг, С.В. Саксонов. Тольятти: ИЭВБ РАН, 2003. С. 81-83.

Саксонов С.В. Дополнения к первому изданию Красной книги Самарской области (сосудистые растения) // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2007. № 3. С. 22-27.

Саксонов С.В. Актуальные задачи ведения региональных Красных книг: современные тенденции // Изв. Самар. НЦ РАН. 2015. Т. 17, № 4(4). 609-613.

Саксонов С.В., Васюков В.М., Сенатор С.А. Обзор видов растений, вновь включенных в Красную книгу Самарской области (редакция 2016 года) // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2016. Т. 10, № 3. С. 69-74.

Саксонов С.В., Васюков В.М., Сенатор С.А.

Виды растений, рекомендуемые для внесения во второе издание Красной книги Российской Федерации // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2017. Т. 9, № 2. С. 86-97.

Саксонов С.В., Конева Н.В., Сенатор С.А.

Заметки о видах Красной книги Самарской области // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2007а. № 4. С. 109-197.

Саксонов С.В., Конева Н.В., Сенатор С.А.

Свод изменений и дополнений к Красной книге

Самарской области // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2007б. № 3. С. 29-101.

Саксонов С.В., Розенберг Г.С. Организационные и методические аспекты ведения региональных Красных книг. Тольятти: ИЭВБ РАН, 2000. 164 с.

Саксонов С.В., Сенатор С.А. Статус редкости видов Красной книги Самарской области, как интегральный показатель состояния природных популяций // Научно-исследовательская деятельность ТФ УРАО 2009/2010 учебного года: Сб. материалов исследовательской работы преподавателей и студентов Тольяттинского филиала Университета РАО / под общ. ред. д-ра пед. наук Б.И. Канаева. Тольятти, 2010. С. 113-125.

Саксонов С.В., Сенатор С.А. Проект второго издания Красной книги Самарской области. I. Редкие и исчезающие виды сосудистых растений, нуждающиеся в охране // Раритеты флоры Волжского бассейна. Тольятти: Кассандра, 2012. С. 198-214.

Саксонов С.В., Сенатор С.А., Васюков В.М.

и др. Новые места нахождения видов, включенных в Красную книгу Самарской области (по результатам мониторинга 2007-2008 гг.) // Самарская Лука: Бюл. 2008. Т. 17, № 4(26). С. 846-871.

Сенатор С.А., Саксонов С.В. Красная книга Волжского бассейна в реализации принципов устойчивого развития // Поволж. экологический журн. 2014. № 1. С. 38-49.

Сенатор С.А., Саксонов С.В., Раков Н.С. Обзор предложений по совершенствованию списка охраняемых таксонов Самарской области. II. Изменения категорий статуса редкости // Изв. Самар. НЦ РАН. 2012. Т. 14, № 1(7). С. 18541859.

Таранова А.М., Саксонов С.В. Очерки о растениях Красной книги Самарской области / Под ред. канд. биол. наук С.А. Сенатора и Н.В. Коневой. Тольятти: Кассандра, 2010. 155 с.

Шаронова И.В., Ильина В.Н. О некоторых редких видах растений Заволжья, предлагаемых к внесению в Красную книгу России // Проблемы Красных книг регионов России: Материалы международ. научно-практ. конф. (30 ноября — 1 декабря 2006 г., Пермь) / Перм. ун-т. Пермь, 2006. С. 193-196.

Щербаков А.В. О проекте второго издания Красной книги Самарской области: взгляд московского гидроботаника // Изв. Самар. НЦ РАН. 2013. Т. 15, № 3. С. 85-87.

Грибной календарь на июнь, июль, август, весну и осень

Грибы — особый дар природы! Они вкусны и используются кулинарами в самых разнообразных блюдах. А какое удовольствие доставляет сбор грибов: напоенный ароматами трав и листвы лес, щебет птиц и восторг от грибных находок! И никакие грибы из магазина не сравнятся с ароматными грибами из леса, найденными лично. Как же собирать грибы и когда собирать грибы. Ответы на эти вопросы даст календарь грибов или грибной календарь.
 


 

Сбор грибов — не такое уж и простое дело, как может показаться на первый взгляд. Существует оптимальное время для сбора грибов разных видов. И конечно нужны соответствующие погодные условия. Выбрать время для похода за грибными дарами природы поможет календарь грибов. Опытные грибники, конечно, могут обойтись и без него, а вот начинающим грибной календарь придется очень кстати.
 

Начинающий грибник обязательно должен знать, что грибной год начинается в апреле и заканчивается во второй половине октября. Учтите, что каждый гриб растет в определенное время, а не постоянно. Поэтому, если Вы нацелены конкретно на опят или сыроежек, то для начала Вам необходимо заглянуть в календарь грибов, уточнить месяца, когда они растут.

  • Грибной календарь на Апрель

Апрельсамый сложный месяц для грибов, фиксирует календарь грибов. В такое время очень часто еще бывают заморозки, поэтому не все грибы способны пережить морозы, снег и холод. Выживают только самый стойкие. Грибы появляются приблизительно в середине апреля. Вы сможете найти сморчки в самой гуще леса, именно там, где все еще лежит снег. Они растут на открытых участках, куда больше всего попадает солнечный свет. А вот дубовые и сосновые боры обязательно порадуют Вас строчками и омфалиями гаревыми.

  • Грибной календарь на Май
Май также особо не радует грибников изобилием своих даров, сообщает календарь грибов. Это месяц, когда грибы только подготавливаются к своему летнему и щедрому сезону. Но, если сильно постараться, то глубоко в лесу можно найти сморчковые шапочки и коренастые строчки. Конец мая больше порадует грибников, так как в этот период есть большая вероятность найти маслят и лисичек. Конечно же, основная масса данного вида грибов появится чуть позже, но если Вам так не терпится, то у Вас есть возможность найти таких грибов-первопроходцев.
  • Грибной календарь на Июнь
В июне, как гласит каленадрь грибов, существует народная примета: Если земляника уже заалела в траве, а рябина и калина уже покрылись цветами, то можно смело отправляться на поиски сыроежек. Найти их не составит особого труда, так как они располагаются на открытых местах, и ни от кого не прячутся. В середине июня Вы смело можете отправляться на сбор подберезовиков, маслят и моховиков. Конец месяца Вас щедро порадует крепышами, боровиками и подгруздками.
  • Грибной календарь на Июль
Июль, как фиксирует календарь грибов, один из не самых удачных месяцев для грибника. Дождей в этот период мало, а палящее солнце просто не дает нормально расти и развиваться грибам. Поэтому в этот период не стоит надеяться на особый урожай грибов. Но, все-таки если установилась дождливая погода, то можете смело отправляться в лес на поиски подберезовиков, подосиновиков и маслят, сообщает календарь грибов.
  • Грибной календарь на Август
Август – это один из самых благоприятных для грибников месяцев, подсказывает календарь грибов. Жара спадает, ночные туманы учащаются, а роса становится обильнее. В лесах можно найти огромное количество маслят. Также Вам обязательно повезет на осенние опята и польские грибы. Рыжики – это самый настоящий подарок для грибника, который отправился в лес в августе.
  • Грибной календарь на Сентябрь, Октябрь
Сентябрь и октябрь – это холодные месяца, в которые уже сложно найти большое количество грибов, но все же постараться стоит. Календарь грибов отмечает, что, если Вы проявите упорство и настойчивость, то сможете порадовать себя сыроежками, козляками и зеленушками.
Подробнее с расписанием роста грибов можно ознакомиться в Грибном календаре ниже. Каждый месяц богат на грибы. Просто, для каждого гриба отведено специальное время. Поэтому, если у Вас есть какие-либо предпочтения, то Вам лучше всего ориентироваться именно так календарь грибника.

Календарь грибов на июнь июль август весну и осень


Какие грибы собирать
Когда собирать грибы
грибы в апреле грибы в мае грибы в июне грибы в июле грибы в августе грибы в сентябре грибы в октябре
Сморчки + + +        
Строчки + + +        
Майский гриб   + +        
Вешенка обыкновенная   + + + + + +
Луговой опенок     + + + +  
Подберезовик     + + + +  
Масленок зернистый       + + +  
Летний опенок     + + + + +
Лисичка настоящая       + + +  
Белый гриб     + + + + +
Подосиновик     + + + + +
Плютей олений     + + + + +
Дождевик шиповатый   + + + + + +
Шампиньон обыкновенный     + + + +  
Шампиньон полевой         + +  
Валуй       + + +  
Говорушка ворончатая       + + +  
Гриб-зонтик белый       + + +  
Гриб-зонтик пестрый       + + + +
Груздь настоящий         + +  
Поддубовик       + + +  
Ивишень         + + +
Подгруздок белый         + +  
Подгруздок черный         + +  
Свинушка толстая         + +  

Сыроежка желтая,

пищевая и др.

  + + + + +  
Моховик зеленый     + + + + +
Ежовик желтый         + +  
Колпак кольчатый       + + +  
Масленок лиственничный       + + +  
Волнушка розовая         + + +
Груздь черный       + + + +
Рыжик еловый зеленый         + + +
Рыжик сосновый         + + +
Говорушка серая         + +  
Масленок поздний         + +  
Зимний гриб           + +
Подгруздок черно-белый           + +
Польский гриб         +    
Вешенка осенняя           +  
Рядовка серая           +  
Строчок осенний           + +
Опенок осенний           + +
Рядовка фиолетовая         + +  
Зеленушка         + + +
Гигрофор бурый           + +

 


Теперь вы знаете, когда собирать грибы. Поспешите —  конец июня — прекрасное время для сбора молодых грибов, пригодных для вкусных блюд. Пока еще можно себя потешить изысканной грибной пищей, а уже остальные два летних месяца смело собирайте грибы для солений и маринования! А на закуску интересная информация о грибах и советы грибникам.


Продолжительность жизни грибов

Грибы растут быстро, увеличиваясь за сутки приблизительно на 1-2 см. Средние размеры гриб приобретает за 3-6 дней. Продолжительность жизни опенка, лисички, подберезовика укладывается в 10 дней. До 14 дней живут белый гриб и подосиновик, до 40 — шампиньон. С созреванием спор, количество которых исчисляется десятками миллионов, грибы стареют и часто загнивают.

Советы грибникам

Грибы вкусны и питательны. Если соблюдеть некоторые правила, грибной сезон принесет вам только радость:

  1. Первый признак чистой территории, на которой стоит собирать грибы, это обилие мухоморов.
  2. Если на опушке растут одни сыроежки, её лучше обойти стороной — скорее всего, почва загрязнена. 
  3. 90% грибов растёт по опушкам, просекам и молодым посадкам, так что забираться в чащи, рискуя не найти дорогу домой, смысла нет.
  4. Грибы растут от 1 дня до 3 суток. Оптимальные условия: 10-20 градусов тепла, для пластинчатых и благородных — от 5 до 15 градусов выше нуля. Влажность воздуха — 80-90%, желательны дожди и обильная роса.
  5. В пищу годятся только молодые грибы, у которых шляпки полностью не раскрыты или раскрыты частично. Перезревшие грибы с раскрытой, как зонтик, шляпкой не имеют никакой пищевой ценности. Такой гриб лучше повесить на веточку — пусть споры разнесутся по округе. А вот если шляпка выгнута, как купол,- значит, гриб уже выпустил споры и в нём формируется яд, аналогичный трупному. Он опасен, это основная причина отравлений.

Ранее на тему Грибы:

В Самарской области прошел XVIII областной мордовский праздник «Масторавань тундо» ::Новости::Портал о дружбе народов «ВСЕ МЫ

09.06.2016

5 июня 2016 в сквере «Родина» в Самаре прошел XVIII областной мордовский праздник «Масторавань тундо». Мероприятие, ставшее для нашего региона традиционным, было организовано Самарской региональной общественной организацией «Мордовский национально-культурный центр «Масторава» при поддержке министерства культуры Самарской области, Дома дружбы народов и региональной общественной организацией «Союз народов Самарской области».

Праздник начался с осмотра почетными гостями красочных площадок, организованных муниципальными районами и городами Самарской области. В праздничных шатрах были выставлены предметы традиционного быта мордвы, декоративно-прикладного творчества, национальной литературы, фотовыставки о деятельности мордовских общественных объединений. Как всегда, широко были представлены блюда мордовской национальной кухни: вкуснейшие пироги и блины, лепёшки «сюкорот», «кулага» – кисло-сладкая похлебка из ржаной муки с добавлением калины и сухофруктов, свежие ягоды, солёные и жареные грибы, всеми любимое кислое молоко «чапамо ловсо», и конечно же, традиционный мордовский квас «поза». Здесь же коллективы в ярких национальных костюмах показывали фрагменты обрядов мордвы, пели и плясали, щедро угощали гостей праздника. Повсюду звучала национальная музыка, приветствие «Шумбрат!»…

С приветственным словом и пожеланиями успехов в деле сохранения родного языка и национальной культуры, сохранения дружбы народов, межнационального мира и согласия в регионе выступили председатель мордовского национально-культурного центра «Масторава» Л.А. Колесникова, представитель министерства культуры Самарской области М.С. Пошехонова, директор Дома дружбы народов И.В. Буров. От имени региональной общественной организации «Союз народов Самарской области» участников мероприятия поздравил Н.А. Гамзаев, председатель Самарской областной общественной организации «Культурный центр «Дагестан». Он сказал добрые слова гостям праздника и пожелал всем счастья, радости и мира на нашей родной земле.

Концертную программу открыл знаменитый фольклорный ансамбль «Торама» из г. Саранска – лауреат многих Всероссийских и международных музыкальных фестивалей и конкурсов. Наряду с исполнением мордовских многоголосных песен, ансамбль занимается воссозданием древних обычаев мордвы. 4 и 5 июня этот яркий ансамбль также выступал в качестве гостя на самарской набережной перед жителями и гостями Самары в рамках фестиваля «ВолгаФест – 2016».

В концерте праздника «Масторавань тундо» также приняли участие мордовские фольклорные и эстрадные коллективы Самарской области. На сцене выступили ансамбли и солисты из Самары, Сызрани, Отрадного, Жигулёвска, Похвистневского, Шенталинского, Исаклинского, Клявлинского, Кошкинского, Борского, Сергиевского, Челно-Вершинского, Нефтегорского, Ставропольского, Кинель-Черкасского, Богатовского и других районов. Впервые в областном празднике «Масторавань тундо» приняла участие вокальная группа «Моро» из села Шилан Красноярского района.

Гостей праздника порадовала Людмила Дюдяева – солистка Государственного Волжского русского народного хора им. Петра Милославова, заслуженная артистка Российской Федерации. Несколько эстрадных песен на мордовском и русском языках спели молодые исполнители Александр Славкин и Александр Марухов, которые ещё недавно были участниками областных детских мордовских фестивалей «Од вий».

В этот день в сквере «Родина» все желающие могли купить национальную литературу, словари и разговорники, диски с песнями, футболки с национальными орнаментами, дудочки «нудей», деревянные игрушки Подлесно-Тавлинской школы деревянной резьбы.

Мастера декоративно-прикладного творчества из Самары и муниципальных районов организовали выставку-продажу своих изделий (глиняная посуда, корзины и кубари из прутьев, украшения из бисера, вышивка и др.). Многих по-настоящему удивил Абрамов Алексей Филиппович из села Коноваловка Борского района – он провел мастер-класс плетения мордовских лаптей. У него прекрасное чувство юмора, а говорит он стихами, рожденными по ходу беседы. 4 июля 2016 года ему исполнится 88 лет! Родился Алексей Михайлович в Мордовии и с детства, как себя помнит, плел лапти. В настоящее время он является единственным мастером на всю округу, который умеет плести настоящие мордовские лапти, и они пользуются большим спросом в фольклорных коллективах района и области.

Во время праздника работала детская развлекательная площадка. Весь день звучала музыка, все с удовольствием смотрели концерт, слушали песни на родном языке, общались, фотографировались со своими земляками.

Представители Ставропольского района предложили организаторам праздника провести следующий областной мордовский фестиваль в их районе. А это значит, что мордовские языки, национальные песни, традиции и обычаи живут и будут жить на Самарской земле!




Редкие виды растений, лишайников и грибов

ПАУТИННИК ФИОЛЕТОВЫЙ — Cortinarius violaceus

Семейство Агариковые, или Шампиньоновые — Agaricaceae

СТАТУС. Категория: IIIб. Редкий таксон с широким ареалом, в пределах которого встречается спорадически и с небольшой численностью популяций.

РКР -2/0. Очень редкий вид, тенденции численности не известны. Включен в КК РСФСР (категория 3 (R) — редкий вид) [1].

Статус таксона в сопредельных регионах. Занесен в список охраняемых таксонов Республики Татарстан (категория 1(Cr) — находящийся под угрозой исчезновения вид) [2].

Распространение. Ареал вида охватывает Европу, Сибирь, Дальний Восток, Японию, Китай, Северную Америку. В европейской части России встречается фрагментарно [3].

В Самарской обл. найден только в Предволжье: Жигулевский (Жигулевский заповедник) ландшафтный район.

Найти точки встреч вида в Веб-ГИС «Красная книга Самарской области» или добавить свои

Особенности биологии и экологии. Шляпка до 15 см в диаметре, подушковидно-выпуклая, с завернутым вниз краем, в зрелости плоская, темно-фиолетовая, затем рыжевато-бурая. Ножка 6-15 см длиной, 1-3 см толщиной, внизу булавовоидная. Споры эллипсовидные, неравнобокие, 11-14 х 7-9 мк, бородавчатые. Плодоносит в августе-сентябре. Микоризный гриб, встречается в сосновых, березовых и дубовых лесах.

Численность и тенденции ее изменения. Крайне низкая, тенденции ее изменения неизвестны.

Лимитирующие факторы. Различные виды антропогенной нагрузки (сбор и уничтожение плодовых тел населением).

Принятые меры охраны. Охраняется на территории Жигулевского заповедника.

Рекомендации по сохранению вида в естественных условиях. Мониторинг природных популяций, соблюдение установленного режима охраны на ООПТ, поиск новых мест произрастания вида.

Источники информации. 1. КК РСФСР, 1988; 2. КК Республики Татарстан, 2006. 3. Нездойминого, 1996.

Автор. С.В. Саксонов.

Вернуться к списку редких видов животных, растений, лишайников и грибов

Перейти на страницу Веб-ГИС «Красная книга Самарской области»

 

Наверх

Главная — Грибная радуга

Компания «Грибная радуга» предлагает отличное биоудобрение для ваших полей/огородов — грибной компост (субстрат) после производства грибов. После плодоношения шампиньонов, субстрат представляет собой ценное экологически чистое органическое удобрение.

Компост содержит питательные вещества необходимые для роста и получения высоких урожаев овощных, злаковых, плодовых и ягодных культур.

Состав: 1.0% азота, 1.0% фосфора, 1,0% калия. Кислотность компоста является близко к нейтральной (6.5–6.8), что особенно ценно при внесении его в кислую почву.  Использование компоста в качестве удобрения повышает количество и качество урожая, улучшает структуру почвы, влагоемкость и увеличивает содержание гумуса в почве. В состав входит прелая солома, куриный помёт, торф, остатки от плодоношения шампиньонов.

Исследования показали, что грибной субстрат после шампиньонов является ценным органическим удобрением. Куриный помет и остатки растительного материала — все это содержит азот, углерод, питательные вещества, а также большое количество минералов, микроорганизмов и бактерий. Растения нуждаются во всех этих компонентах для хорошего роста, высокого иммунитета и качественного плодоношения. При попадании в почву, многие микроорганизмы, находящиеся в компосте, в лучшую сторону изменяют её химические и физические свойства, а постоянное использование химических удобрений лишь истощает землю и природные организмы, населяющие её, такие как черви, микробы и полезные бактерии гибнут или начинают искать лучшие источники питания.

Воздействие компоста на почву может быть очень положительным. Остатки органики изменяют структуру почвы, позволяя песчаной почве лучше удерживать воду, а глинистой осушаться. Вещества, содержащиеся в компосте, находятся в более доступном виде, тем самым, они лучше и быстрее усваиваются растениями, чем те же вещества в любом другом химическом удобрении.

По вопросам приобретения компоста самовывозом навалом обращайтесь по тел: +7-910-740-44-36.

Грибная радуга является поставщиком качественных свежих шампиньонов на российском рынке. Мы предлагаем свежий шампиньон размером 5–6 см, а также мелкий в размере 2,5 см,  и крупный — 7–9 см ( гриль). Срок хранения шампиньонов 14 дней (при правильном хранении).

Минимальная партия заказа — 5 тонн.

Наша продукция имеет декларации качества, а компания работает по программе ISO 2200 и согласно системе менеджмента HASSP.  Подробнее ознакомится с этой информацией и с ассортиментом можно на сайте в разделе «Продукция».

(PDF) Экономическая оценка потенциала развития грибоводства в Российской Федерации

Международная конференция по устойчивому развитию приграничных регионов

IOP Conf. Серия: Наука о Земле и окружающей среде 395 (2019) 012076

IOP Publishing

doi: 10.1088 / 1755-1315 / 395/1/012076

2

Выращивание и производство грибов до 2020 года было принято на государственном уровне. Его цель —

реализовать значительную государственную поддержку отрасли.Высокие границы указаны в этой программе

, реализация которой должна быть осуществлена ​​в ближайшее время [2]. По данным Продовольственной и сельскохозяйственной организации Объединенных Наций

, Россия занимает примерно 22 место в структуре мирового производства грибной продукции

и только 46 по потреблению на душу населения только

. Потребление культивируемых грибов на душу населения в развитых странах колеблется от 2 до 4.5

кг. В России этот показатель составляет около 1 кг на человека. Таким образом, основная цель программы — достичь

годового объема производства грибов около 143 000 тонн [3]. Емкость внутреннего рынка грибной продукции

в финансовом выражении составляет около 25 млрд руб. Таким образом, создается уникальная ситуация, позволяющая увеличить производство свежих грибных продуктов

, богатых белком и экологически безопасных

, произведенных на специализированных предприятиях по выращиванию, и практически полностью заменить импортные

отечественных продуктов.

2.

Материалы и методы

При проведении экономического анализа потенциала развития отечественных грибов

производственных и современных технологических систем для производства съедобных грибов, наиболее широко используемых в мировом производстве грибов

грибов и рекомендованных к внедрению, используются следующие методы

: экономико-статистические, методы системного и сравнительного анализа, математические

моделирования и планирования [4], [5].Исследование основано на сборе и анализе информации и статистических данных

Росстата, международной организации ФАО (Продовольственная и сельскохозяйственная организация Объединенных Наций

), оба из которых имеют достоверную информацию в области глобального производства. различных

видов продуктов питания. Также были использованы данные Республиканского производственно-научного объединения

«Теплицы России», оценка тенденций развития мирового промышленного производства грибов

и состояние отечественного сектора производителей грибов.Наше исследование было проведено в

следующих трех этапах: (1) Анализ уровня мирового производства съедобных грибов и темпов его развития

за последние 20-25 лет; (2) Оценка состояния отечественной грибной отрасли

; (3) Обоснована и предложена бизнес-инновационная модель перспективного развития отечественной грибной индустрии

, основанная на использовании новейшей организационно-технологической системы.

3.Результаты

Исследование проводилось в три этапа. На первом этапе был проведен анализ мирового производства шампиньонов

. Производство шампиньонов как вид экономической деятельности в

развитых странах выделено в самостоятельную отрасль сельскохозяйственного производства. В мире в 2015-2017 гг. Производственная площадь культивируемых грибов составила

га. Это огромная территория

, позволяющая достичь объемов производства на уровне около 11 миллионов тонн грибной

продукции.По данным ФАО, только в Китае в 2017 году произведено около 7,8 млн тонн различных видов грибов

. За последние 35 лет производство грибов увеличилось в 10 раз (около 1,5

млн тонн в 1980 г., около 11 млн тонн в 2017). В этой структуре шампиньоны удерживают первенство

(более 80%), но другие виды грибов, такие как шиитаке и вешенки

, становятся все более популярными благодаря своим питательным и лечебным свойствам.В мире производится около 15 других

видов различных культурных грибов. Крупнейшими регионами производства грибов

также являются Европа. В странах Европы ежегодно выращивается 1 300 000 тонн шампиньонов 9 0003 9 0002. Около 70% из них продаются в свежем виде, а 30% — консервированные или замороженные). Польша отличилась

с точки зрения активного роста производства свежих грибов, достигнув уровня 260 тысяч тонн,

почти сравнявшись с Нидерландами.

США — крупнейший производитель грибов в Северной Америке. Годовой объем производства шампиньонов

относительно постоянен и составляет 420 000 тонн в год. Большинство шампиньонов продается в свежем виде

на внутреннем рынке.

Канада — второй по величине производитель шампиньонов в Северной Америке. Годовой объем составляет около

100 000 тонн. Все свежие грибы поступают на внутренний рынок и рынок США в небольших количествах.

Новая реальность, разрушение стереотипов

Если вы спросите европейских грибоводов, что они думают о выращивании грибов в России, они, скорее всего, вежливо спросят еще раз: существует ли оно на самом деле?

И ответ:
Да, он существует и быстро развивается.

В мире существует немало стереотипов о России. Те, что связаны с выращиванием грибов, можно кратко охарактеризовать следующим образом:

  • Старомодное оборудование
  • Дорогое финансирование
  • Неясный инвестиционный климат

Рассмотрим эти утверждения подробнее.


До 2017 года в России работали три относительно современных предприятия. Выращивание хозяйств Приневское (Санкт-Петербург — Северо-Западный регион), Орикс (Самара — Поволжье), компостный двор НГК Кашира (Московская область).В то же время крупнейшая грибная ферма, также принадлежащая НГК Кашира, очень далека от современного идеала.

В 2017 году в России были запущены два комплекса по выращиванию грибов: «Грибная радуга из Курска» и грибной комплекс «Зеленая линия» крупнейшей в России торговой сети «Магнит», расположенный на юге России, в Краснодаре. Производительность их первых этапов — около 14 тысяч тонн грибов в год.

В 2018 году была запущена ферма Агроинвест с собственным компостированием, а в апреле 2019 года будет запущена ферма Мастер Гриб с собственным компостированием общей мощностью 12000 тонн и 10000 тонн грибов в год.В 2019 году начнут работу Mushroom Сompany из Пензы и IGS Agro из Казани, которые сейчас строятся.

Итак, мы видим, что вместо постсоветской грибной индустрии, которая еле справлялась с выращиванием 10 000 тонн грибов в год и еще хуже продавала их, возникает новая, молодая и красивая отрасль.

Есть несколько причин для такого развития событий. Прежде всего, девальвация рубля, произошедшая в конце 2014 года, привела к значительному увеличению маржи производства грибов и компоста.Производство грибов стало прибыльным, и в грибоводство пошли инвестиции.

Вторая причина — значительное удешевление финансирования. После реализации Государственной программы развития грибной отрасли (я ее соавтор) правительство России начало субсидировать процентную ставку по кредитам. В результате крупнейшие проекты получили кредиты под 3,5 — 4,5% годовых в рублях.

Третья причина — изменение инвестиционного климата.Во многих регионах России для инвесторов созданы условия, в которые невозможно было поверить еще 5-7 лет назад. Бесплатное предоставление земли под размещение предприятий, снижение социальных налогов, обнуление налога на имущество на 5-10 лет работы предприятия.

За счет этого грибная отрасль России будет производить до 85% от уровня прироста внутреннего потребления свежих грибов в России к 2021 году.

Объем производства достигнет 84 000 тонн свежих шампиньонов.Такая промышленность потребует значительного количества ресурсов, которые были и будут импортироваться в обозримом будущем: оборудование для производства и упаковки, мицелий, пищевые добавки, химия, консалтинговые услуги.

Итак, российский В2В рынок грибной продукции становится очень интересным для поставщиков товаров и услуг. Пока этот рынок еще совсем молодой — он снимет с полки то, что посветлеет ярче. Нужно время, чтобы выбрать умные решения, ценность которых раскрывается постепенно.

В следующей статье я расскажу о нарастающих болезнях молодой российской промышленности и сделаю прогноз прогноза ее развития.

Оценка субстратов тропических лесов для выращивания и производства протеаз с помощью Pleurotus djamor

Балан В., Мунафо, Дж. П. Дж., Паттатилл, С., Мерритт, Б. Б., Венкетачалам, С. и Нг, В. (2018). Протоколы оценки пищевой и потенциальной пользы съедобных грибов для здоровья.Текущая биотехнология, 7 (1), 34-58.

Барх А., Шарма В. П., Аннепу С. К., Камаль С., Шарма С. и Бхатт П. (2019). Генетическое улучшение Pleurotus (вешенка): обзор. 3 Biotech, 9 (322), 1-14.

Бенмрад, М. О., Мехри, С., Джауади, Н. З., Эльхул, М. Б., Рекик, Х., Саяди, С., Бежар, С., Кешау, Н., и Джауади, Б. (2019). Очистка и биохимическая характеристика новой термостабильной протеазы из штамма CTM10057 вешенки Pleurotus sajor-caju с промышленным интересом.BMC Biotechnology, 19 (43), 1-18.

Буманлаг, К. П. Б., Калау, С. П., Дулай, Р. М. Р., и Рейес, Р. Г. (2018). Оптимальные условия для роста мицелия и продукции базидиокарпия Pleurotus djamour на среде на основе кукурузы. Международный журнал биологии, фармации и смежных наук, 7 (4), 558-575.

Кастильо, Т.А. (2009). Caracterização fisiológica, produção de biocompostos e biomassa em subrato agroflorestal amazônico de Pleurotus e Lentinus.151 ф. Tese (Doutorado em Biotecnologia) — Федеральный университет ду Амазонас, Манаус.

Карраско-Гонсалес, Дж. А., Серна-Сальдивар, С. О., и Гутьеррес-Урибе, Дж. А. (2017). Пищевая ценность гриба Pleurotus. Журнал пищевого состава и анализа, 58, 69-81.

Деви, С. К., Прабху, Н., Моника, С., Свапна, Н. М., Вайшали, С., и Гаджендран, Т. (2020). Секвестрация и очистка основных ферментов из отходов компоста Pleurotus florida и исследования их применения.Журнал прикладной биологии и биотехнологии, 8 (1), 64-68.

Флетчер И. А. (2019). Влияние температуры и питательной среды на рост мицелия штаммов Pleurotus ostreatus и Ganoderma Lucidum. Сплошной журнал микробиологии и инфекционных болезней, 2 (5), 1-5.

Фонсека, Р. Б. Т., Сильва, Т. А., Алекрим, М. М., Круз, Р. Ф., Филхо и Тейшейра, М. Ф. С. (2015). Выращивание и исследования питания съедобного гриба из Северной Бразилии.Африканский журнал исследований микробиологии, 9 (30), 1814-1822.

Израиль, К. М. (2005). Используется для обработки пальмовых растений для производства гидролизных энзимов для грибов, производящих Polyporus. Dissertação (Mestrado em Engenharia Ambiental) — Centro de Ciências Tecnológicas, Universidade Regional de Blumenau, Блуменау. 136 ф.

Джегадиш, Р., Лакшманан, Х., Каб-Йул, Дж., Сабаратнам, В., и Раман, Н. (2018). Выращивание вешенки розовой Pleurotus djamor var.roseus на различных пожнивных остатках малозатратной техникой. Журнал микопатологических исследований, 53 (3), 213-220.

Лаурсен А. (2018). Влияние различных источников азота на рост мицелия вешенки, Pleurotus ostreatus. Интернет-публикация: http://stud.epsilon.slu.se, стр. 1-60.

Мачадо, А. Р. Г., Тейшейра, М. Ф. С., Кирш, Л. С., Кампело, М. К. Л., и Оливейра, И. М. А. (2016). Пищевая ценность и протеазы Lentinus citrinus, полученные в результате твердофазной ферментации лигноцеллюлозных отходов из тропических регионов.Саудовский журнал биологических наук, 23 (5), 621-627.

Махадеван, К., и Шанмугасундарам, К. (2018). Сравнительное влияние различных питательных сред на рост мицелия Pleurotus sapidus. Журнал фармакогнозии и фитохимии, 7 (4), 874-878.

Marino, R.H .; Abreu, L.D .; Мескита, Дж. Б., и Рибейро, Г. Т. (2008). Crescimento e cultivo de Diferentes isolados de Pleurotus ostreatus (Jacq .: Fr.) Kummer em serragem da casca de coco.Arquivos do Instituto Biológico, 75 (1), 29-36.

Minitab, 2017. Статистическое программное обеспечение Minitab. LEAD Technologies, Inc. Версия 18.0.

Оропеса-Герреро, М. П., Сантос-Санчес, Н. Ф., Салас-Коронадо, Р.; Valadez-Blanco, R .; Эрнандес-Карлос, Б., и Гуадаррама-Мендоса, П. К. (2018). Продуктивность и антиоксидантная активность диких, восстановленных и гибридных штаммов розового гриба вешенки Pleurotus djamor (Agaricomycetes) из Мексики. Международный журнал лекарственных грибов, 20 (7), 607-621.

Осунде, О. М., Олаинка, А., Фашина, К. Д., и Торимиро, Н. (2019). Влияние соотношения углерода и азота в лигноцеллюлозных субстратах на урожайность грибов (Pleurotus pulmonarius). Журнал библиотеки открытого доступа, 6, 1-8.

Палета, Р. А., Виейра, Дж. Н., Невес, К. С. С., и Тейшейра, М. Ф. С. (2011). Crescimento micelial vertical de duas espécies de Pleurotus em resíduo agroindustrial da Amazônia utilizando planejamento fatorial. Caderno de Pesquisa Série Biologia, 23 (3), 52-60.

Путцке Дж. И Путцке М. Т. Л. (2019) Когумелос (грибы Agaricales) no Brasil — Ordens Boletales (Boletaceae, Paxillaceae), Polypolares (Lentinaceae / Pleurotaceae, Polyporaceae). Russalales (Russaleceae) e Agaricales (Cortrinariaceae, Inocybaceae, Pluteaceae e Strophariaceae), Сан-Габриэль: электронная книга, 380 f.

Рагаса К., Тан, М. С. С., Тинг, Дж., Рейес, Р. Г., Бркляча, Р., и Урбан, С. (2016). Химические составляющие Pleurotus djamor.Der Pharma Chemica, 8 (2), 343-346.

Раман, Дж., Джанг, К. Ю., О, Ю. Л., О, М., Им, Дж. Х., Лакшманан, Х., & Сабаратнам, В. (2021). Выращивание и пищевая ценность известных видов Pleurotus: обзор. Микобиология, 49 (1), 1-14.

Раман, Дж., Харипрасат, Л., Янг, К. Ю., Викинесвари, С. А., и Нанджян, Р. (2018). Выращивание вешенки розовой Pleurotus djamor var. roseus на различных пожнивных остатках малозатратной техникой. J. Mycopathol.Res., 56 (3), 213-220.

Сабри, М. А., Шафик, А., и Чечан, Р. А. (2020). Производство икры высокого качества из новых иракских штаммов съедобных грибов. Архивы растений, 20 (1), 2135-2142.

Сардар, Х., Али, М.А., Айюб, Ч.М., Ахмад, Р. (2015). Влияние различных питательных сред, температуры и уровня pH на рост диких и экзотических видов Pleurotus. Пакистанский журнал фитопатологии, 27 (2), 139-145.

Лосось, Д.(2018). Pleurotus djamor, un hongo con Potencial aplicación biotecnológica para el neotrópico. Scientia Fungorum, 46, 73-85.

Сатпал, С., Гопал, С., Н., Р. С., Анкит, К., Бхану, П., Приянка, Б., и Кумар, Р. (2017). Влияние различных субстратов на рост и урожай вешенки (Pleurotus djamor). Исследовательская статья, 9 (4), 3721-3723.

Секан А.С., Миронычева О.С., Карлссон О., Григанский А.П., Блюм Ю. (2019) Зеленый потенциал Pleurotus spp.в биотехнологии. PeerJ, 1-21.

Сингх С. и Сингх Г. (2018). Влияние условий окружающей среды (pH, температура и среда) на радиальный рост вешенки (Pleurotus djamor). Спектр исследования HortFlora, 5 (4), 7-11.

Соуза, Р.А.Т., Фонсека, Т. Пищевая ценность биопродуктов, полученных в результате полутвердого сбраживания кожуры ананаса съедобными грибами.Африканский журнал биотехнологии, 15 (12), 451-457.

Судха, Г., Джанардханан, А., Мурти, А., Чиннасами, М., Гунасекаран, С., Тиммараджу, А., и Гопалан, Дж. (2016). Сравнительное исследование антиоксидантной активности метанольных и водных экстрактов плодовых тел съедобного гриба Pleurotus djamor. Food Sci. Biotechnol. 25 (2), 371-377.

Тейшейра, М. Ф. С., Сильва, Т. А., Палета, Р. А., Карнейро, А. Л. Б., и Атаид, Х. М.(2011). Fungos da Amazonia: uma riqueza uneplorada (Aplicações Biotecnológicas). Манаус: Эдуа.

Терадинами, М., Тангешвари, С., Арулсами, М., и Партасарати, С. (2019). Составная койпит с использованием съедобных грибов (Pleurotus spp.) Для борьбы с фитофторозом и гнилью оболочки риса. Исследовательский журнал сельскохозяйственных наук, 10 (3), 521-525.

Тоан, Н.В., и Куи, Л. Н. (2018). Приготовление и производство муки и печенья улучшенного качества из грибов шитаке (Lentinus edodes).Клинический журнал питания и диетологии, 1 (1), 1-9.

Ву, Н., Тиан, Ф., Мудли, О., Сон, Б., Цзя, К., Е, Дж., Л.В., Р., Цинь, З., и Ли, К. (2019). Оптимизация остатков сельскохозяйственных культур в качестве субстратов для производства Pleurotus pulmonarius. AMB Expr, 9, 1-9.

Кишечные грибы причинно участвуют в сборке микробиома и развитии иммунитета у мышей

Колонизация мышей-гнотобиотиков

Мыши GF C57Bl / 6J в возрасте от десяти до пятнадцати недель были получены из отделения для мышей-гнотобиотов Международного центра микробиома (IMC) в Университете Калгари.Самкам мышей дважды вводили перорально через желудочный зонд с интервалом в 3 дня 100 мкл консорциума микроорганизмов или сохраняли стерильность. Колонизация состояла из консорциумов (i) 12 бактерий, происходящих от мыши, «B» 27 ( Acutalibacter muris, A. muciniphila, Bacteroides caecimuris , B. longum subsp. animalis , B. coccoides, C. .clostridioforme, C. innocuum, E. faecalis, F. plautii, L. reuteri, M. Кишечник и T. muris ), (ii) пять видов дрожжей, ранее связанных с риском атопии и астмы у младенцев, «Y ” 12,13 ( C.albicans, C. glabrata, C. parapsilosis, I. orientalis и R. mucilaginosa ), или (iii) комбинация всех 17 видов бактерий и дрожжей, «B + Y» (источник микробов, используемый в дополнительной таблице. 1). Инокуляты готовили в анаэробных условиях путем смешивания 100 мкл 2-дневных микробных культур каждого вида. Бактерии выращивали в изысканном бульоне анаэробов (LabM, Heywood, Lancashire, UK), а дрожжи — в бульоне из дрожжевой плесени (YM; BD, Sparks, MD, USA). После второго желудочного зондирования мышей спаривали в пары при соотношении самок: самцов на клетку 2: 1.Чтобы гарантировать микробную колонизацию желаемым консорциумом у мышей F1, соответствующие инокуляты дополнительно наносили на области живота и сосков самок на 3 и 5 дни после рождения, как описано ранее 48 . Две группы мышей, колонизированных как бактериями, так и дрожжами, также получали антибиотик аугментин (0,2 мг / мл; Sigma, Oakville, ON, Canada) или противогрибковый флуконазол (0,5 мг / мл; Sigma) в стерильной питьевой воде с 7 по 14 после рождения. Растворы для обработки готовили растворением противомикробных препаратов в дистиллированной воде с последующей стерилизацией на фильтре.Мышей содержали максимум по пять животных на клетку-изолятор и помещали внутри гнотобиотических гибких пленочных изоляторов в IMC при цикле 12 часов свет / 12 часов темноты, относительной влажности 40%, температуре 22-25 ° C и неограниченном доступе. к стерильной пище и воде. Все эксперименты проводились в соответствии с протоколами, утвержденными Комитетом по уходу за животными Университета Калгари, в соответствии с рекомендациями Канадского совета по уходу за животными.

Культура грибов в селективной среде

Колонизацию грибов оценивали путем культивирования в селективной среде.Осадки фекалий мышей (~ 20 мг) растворяли в 500 мкл 0,9% стерильного физиологического раствора, серийно разбавляли в десять раз, и 100 мкл каждого разведения наносили на чашки с агаром YM с добавлением гентамицина (10 мкг / мл; Sigma) и хлорамфеникола (200 мкг / мл). мкг / мл; Sigma). Планшеты инкубировали при 25 ° C и проверяли на наличие дрожжевых колоний в течение до 10 дней. Концентрацию жизнеспособных грибов определяли методом подсчета колоний на чашках.

Количественная оценка грибков и бактерий (анализы кПЦР)

Концентрации грибковой и бактериальной ДНК в фекалиях определяли путем количественной амплификации генов грибковой 18S и бактериальной 16S рРНК, как описано ранее 12,49,50 .Микробную ДНК кишечника получали из образцов фекалий с использованием набора DNeasy PowerSoil Pro (Qiagen, Hilden, Германия) в соответствии с инструкциями производителя, элюировали водой, свободной от нуклеаз, и хранили при -80 ° C. Все реакции кПЦР проводили с использованием iQ SYBR Green Supermix (BioRad Laboratories, Геркулес, Калифорния, США). Для протокола кПЦР 16S 10 мкл реакции состояли из 5 мкл мастер-смеси, 0,5 мкл каждого праймера (u16Sfr и u16Srv; см. Дополнительную таблицу 1) при 10 мкМ, 2 мкл воды, свободной от нуклеаз, и 2 мкл 1 нг / мкл разведения экстрагированной матричной ДНК.Программа термоциклера для кПЦР 16S состояла из начального 5-минутного этапа при 94 ° C, за которым следовали 40 циклов при 94 ° C в течение 15 секунд, 60 ° C в течение 30 секунд и 72 ° C в течение 30 секунд, а также конечная кривая плавления, состоящая из одного цикла: 95 ° C в течение 15 секунд, 60 ° C в течение 1 минуты, 95 ° C в течение 15 секунд и 60 ° C в течение 15 секунд. Для протокола кПЦР 18S грибов 20-мкл реакции состояли из 10 мкл мастер-смеси, 2,5 мкл каждого праймера (FR1 и FF390; см. Дополнительную таблицу 1) при 10 мкМ, 3 мкл воды, свободной от нуклеаз, и 2 мкл 1 нг. / мкл разведения матричной ДНК.Программа термоциклера для грибков 18S qPCR состояла из начального 10-минутного этапа при 95 ° C, за которым следовали 40 циклов при 95 ° C в течение 15 с, 50 ​​° C в течение 30 с и 70 ° C в течение 60 с, а также окончательная кривая плавления. состоящий из одного цикла: 95 ° C в течение 15 секунд, 60 ° C в течение 1 минуты, 95 ° C в течение 15 секунд и 60 ° C в течение 15 секунд. Все образцы анализировали в двух экземплярах, и концентрацию рассчитывали на основе стандартных кривых, построенных с использованием бактериальной геномной ДНК (экстрагированной с помощью набора DNeasy PowerSoil Pro; Qiagen) или геномной ДНК грибов (экстрагированной с помощью набора геномной ДНК YeaStar; Zymo Research, Ирвин, Калифорния, США).ЦПЦР выполняли в системе для ПЦР в реальном времени StepOne Plus (Applied Biosystems, Фостер-Сити, Калифорния, США) в Snyder Resource Laboratories, Университет Калгари.

Содержание воды в фекалиях

Осадки фекалий собирали и сразу взвешивали (5–10 мышей / группа лечения). Гранулы сушили в течение ночи при 50 ° C, повторно взвешивали для определения соотношения влажный: сухой вес.

Оценка желудочно-кишечного барьера и транзит через тонкий кишечник

Проницаемость кишечника измеряли с использованием ранее описанных методов с некоторыми модификациями 51 .Вкратце, мышам (4–5 / группа лечения) вводили перорально через зонд 100 мкл 50 мг / мл тринатриевой соли флуоресцеин-5 (6) -сульфоновой кислоты (FSA, 478 дальтон; Setareh Biotech, LLC, Юджин, штат Орегон, США). ). Транзит через тонкий кишечник оценивали, как подробно описано ранее 52 . Вкратце, через 3 ч 45 мин после введения через желудочный зонд FSA мышам вводили через зонд 200 мкл Evans Blue (5% суспендированные в 5% гуммиарабике; Sigma). Через четыре часа после введения через желудочный зонд FSA и через 15 минут после введения через желудочный зонд Evans Blue животных анестезировали изофлуораном и брали кровь путем пункции сердца для определения содержания FSA в сыворотке.Крови давали возможность свернуться при комнатной температуре, центрифугировали при 2000 × г в течение 10 мин и супернатант (сыворотку) считывали на спектрофотометре при 485/535 нм. Концентрация FSA в сыворотке (мкг / мл) определялась по стандартной кривой. Для оценки транзита через тонкий кишечник животных умерщвляли путем смещения шейных позвонков и сразу же удаляли весь желудочно-кишечный тракт от желудка до ануса. Расстояние, пройденное цветным маркером, измеряли и выражали в процентах от общей длины тонкой кишки от привратника до слепой кишки.Как описано ниже, определяли массу слепой кишки, длину тонкой кишки и толстой кишки, а ткань толстой кишки использовали для проведения ex vivo измерения секреции ионов и трансэпителиального сопротивления.

Пропульсию толстой кишки, массу слепой кишки и длину тонкой и толстой кишки

Дистальную продвижение толстой кишки измеряли, как описано ранее 53 , с небольшими изменениями. Животным (4–5 человек в группе лечения) давали возможность акклиматизироваться в течение 30 минут после перевода в лабораторию.Мышей слегка анестезировали изофлуораном перед тем, как пластиковую бусину (диаметром 2,5 мм) вставляли на 3 см в дистальный отдел толстой кишки с помощью силиконового толкателя. Время до изгнания бусинки определяли в секундах. После изгнания шариков мышей анестезировали изофлуораном, умерщвляли смещением шейки матки, и сразу же удаляли весь желудочно-кишечный тракт от желудка до ануса для измерения веса слепой кишки и длины тонкой кишки и толстой кишки. Ткань подвздошной кишки использовали для проведения ex vivo измерения секреции ионов и трансэпителиального сопротивления, как описано ниже.Для каждой убитой мыши (8-10 / группа обработки) взвешивали полную слепую кишку, затем удаляли ее содержимое и повторно взвешивали пустую слепую кишку. Измеряли длину подвздошной кишки от привратника до слепой кишки и длину толстой кишки.

Измерение секреции ионов и трансэпителиального сопротивления

Сегменты полной толщины терминального отдела подвздошной кишки, проксимального отдела ободочной кишки и дистального отдела толстой кишки вскрывали вдоль границы брыжейки, очищали от просветного содержимого и помещали в камеры Уссинга (Physiologic Instruments, Сан-Диего, Калифорния). , США) с открытой площадью 0.3 см 2 . Ткани промывали при 37 ° C в насыщенном кислородом (95% O 2 , 5% CO 2 ) растворе Кребса (pH 7,4) с 10 мМ глюкозы и маннита в серозном и слизистом отделах соответственно. Ткани выдерживали в условиях фиксации напряжения (0 В) и давали уравновеситься в течение 15–20 минут, после чего измеряли базальный ток короткого замыкания (Isc, мкА / см 2 ) и трансэпителиальный потенциал, чтобы рассчитать базальный трансэпителиальный сопротивление по закону Ома (TER, Ом / см²).Изменения в чистом потоке электрогенных ионов оценивали в подвздошной кишке путем измерения изменений Isc в ответ на деполяризацию нейронов 10 мкМ вератридина (Calbiochem, Сан-Диего, Калифорния, США) или в ответ на стимуляцию мускариновых рецепторов 100 мкМ карбахола (Sigma). Измеряли разницу между базальным Isc и пиком Isc, зарегистрированным после добавления вератридина или карбахола (ΔIsc, мкА / см 2 ). Положительный ΔIsc указывает на направленный светом отрицательный чистый перенос заряда (секреция анионов).Измерения проводились и усреднялись в двух соседних сегментах кишечника одной и той же мыши для каждой области кишечника (4–5 мышей / группа лечения).

Модель DSS-колита

Модель DSS-индуцированного колита была выполнена, как описано ранее 54 , с небольшими модификациями. Вкратце, мышей F1 в возрасте 7 недель (7–11 / группа лечения) лечили в течение 5 дней подряд 1,5% DSS (Alfa Aesar, Хаверхилл, Массачусетс, США) в стерильной питьевой воде. Раствор DSS готовили растворением колитогенного агента в дистиллированной воде с последующей стерилизацией фильтрованием.Потребление DSS контролировали ежедневно, определяя объем воды, израсходованный на клетку. Ежедневно выполнялись медицинские осмотры и измерения массы тела, чтобы отслеживать прогрессирование заболевания. Кал были взяты для анализа фекальных маркеров воспаления. Скрытую кровь определяли с помощью системы Hemoccult Fecal Occult Blood Slide Test System (Beckman Coulter, Brea, CA, USA), а белок липокалина-2 (Lcn-2) анализировали в ELISA Mouse Lipocalin-2 / NGAL DuoSet (R&D Systems, Миннеаполис, Миннесота). , США). В конце лечения DSS мышей анестезировали изофлураном и умерщвляли путем смещения шейных позвонков.Срезы толстой кишки получали для гистологии и подвергали быстрой заморозке для измерения цитокинов с помощью набора U-Plex T Cell Combo Assay Kit в MESO QuickPlex SQ 120 (Meso Scale Discovery, Rockville, MD, USA). Срезы для гистологии фиксировали в 10% нейтральном забуференном формалине (EMD Chemicals, Гиббстаун, Нью-Джерси, США) и заливали парафином. Гистологические срезы окрашивали гематоксилином и эозином для оценки воспаления, как описано ниже. Замороженные ткани взвешивали и лизировали в 600 мкл буфера для лизиса, состоящего из 150 мМ хлорида натрия (EMD Chemicals), 20 мМ трис-гидрохлорида, pH 7.5 (EMD Chemicals), 1 мМ EGTA (этиленгликоль-бис (β-аминоэтиловый эфир) -N, N, N ‘, N’-тетрауксусная кислота; Sigma), 1% поверхностно-активное вещество Triton X-100 (EMD Chemicals) и 1x коктейль cOmplete Protease Inhibitor Cocktail (Roche, Базель, Швейцария). Концентрацию белка в тканевых лизатах определяли с использованием набора для анализа белков Coomassie (Bradford) (Thermo-Fisher, Waltham, MA, USA).

Гистологическая оценка толстой кишки

Воспаление оценивали вслепую в соответствии с модифицированным протоколом Chassaing et al. 54 Каждому разделу были присвоены баллы на основе следующих параметров: (i) воспалительная инфильтрация (0 = нет, 1 = воспалительные клетки только выше мышечной серозной оболочки, 2 = воспалительные клетки в подслизистой оболочке, 3 = воспалительные клетки в серозной мышечной ткани и слизистой мышечной ткани , или 4 = обширное воспаление в слизистой оболочке и эпителиальном слое), (ii) повреждение крипты (0 = нет, 1 = <30%, 2 = <60%, 3 = неповреждена только поверхность эпителия, или 4 = вся крипта и эпителий потеряны ), (iii) истощение бокаловидных клеток (0 = нет или 1 = присутствует) и (iv) абсцесс крипты (0 = нет или 1 = присутствует).Кроме того, параметры «i», «ii» и «iii» дополнительно умножались на градусный коэффициент: 1 = очаговое, 2 = неоднородное или 3 = рассеянное. Общий балл варьировался от 0 до 28 на мышь.

Подготовка и секвенирование библиотеки ДНК

ДНК фекалий микробов, экстрагированная с помощью набора DNeasy PowerSoil Pro (Qiagen), была использована для амплификации области V4 бактериального гена 16S рРНК и области ITS2 генетического маркера ITS грибов. Это сгенерировало готовые к объединению библиотеки ампликонов с двойным индексом, как описано ранее 55,56 .Библиотеки ампликонов 16S были приготовлены на месте с использованием набора TopTaq Master Mix (Qiagen). Ампликоны очищали с помощью набора для очистки QIAquick PCR (Qiagen), количественно определяли с помощью PicoGreen (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA) и разбавляли до 20 нг / мкл для секвенирования. Библиотеки ампликонов ITS2 были подготовлены в Microbiome Insights (Университет Британской Колумбии, UBC, Ванкувер). Образцы ДНК, экстрагированные на предприятии, были отправлены на объект и амплифицированы с использованием ДНК-полимеразы Phusion Hot Start II (Thermo-Fisher). Реакции ПЦР очищали, нормализовали с использованием высокопроизводительного набора для планшетов для нормализации SequalPrep (Applied Biosystems) и точно определяли количественно с помощью набора для количественной оценки библиотеки для количественной ПЦР KAPA qPCR (Roche).Контроли без ДНК-матрицы и фиктивные сообщества с известным количеством выбранных бактерий и грибов были включены в этапы ПЦР и последующего секвенирования для контроля микробного загрязнения и проверки конвейера биоинформатического анализа. Объединенные и проиндексированные библиотеки денатурировали, разбавляли и секвенировали в режиме парных концов на Illumina MiSeq (Illumina Inc., Сан-Диего, США). Секвенирование 16S и ITS2 было выполнено в Microbiome Insights.

Анализ микробиома

Последовательности были проверены на качество, обрезаны, объединены и проверены на химеры с помощью DADA2 v1.10.1 57 конвейеров для 16S или ITS2 и phyloseq v.1.26.1 58 в виде пакетов для R (R Development Core Team; http://www.R-project.org) в RStudio v.1.1463. Мы построили матрицы бактериальных и грибковых сообществ из полученного уникального ASV на основе баз данных UNITE v.8.0 (грибки) 59 и SILVA v.132 (бактерии) 60 . Полные руководства по рабочему процессу можно найти на https://benjjneb.github.io/dada2/tutorial.html и benjjneb.github.io/dada2/ITS_workflow.html. Для анализа на уровне сообществ (альфа- и бета-разнообразие и относительная численность) наиболее распространенные 22 бактериальных и 16 грибковых ASV, которые объясняют> 98% всех назначенных считываний, были объединены по названию вида (см. Файл исходных данных).

Видоспецифическая КПЦР

C. albicans и R. mucilaginosa были количественно определены с использованием видоспецифической КПЦР в образцах ДНК, выделенных из фекалий 4-недельных мышей, как описано ранее 61,62 , с небольшие модификации. Для специфической кПЦР C. albicans- 20 мкл реакции состояли из 10 мкл мастер-смеси, 1 мкл каждого праймера (CALB1 и CALB2; см. Дополнительную таблицу 1) при 10 мкМ, 6 мкл воды, свободной от нуклеаз, и 2 мкл 1 нг / мкл разведения экстрагированной матричной ДНК.Программа термоциклера C. albicans qPCR состояла из начального 10-минутного шага при 95 ° C, за которым следовали 35 циклов при 95 ° C в течение 30 с и 60 ° C в течение 1 минуты, и конечная кривая плавления, состоящая из одного цикла. 95 ° C в течение 15 с, 65 ° C в течение 1 мин и 95 ° C в течение 15 с. Для протокола кПЦР, специфичного для R. mucilaginosa- , 15 мкл реакции состояли из 7,5 мкл мастер-микса, 0,5 мкл каждого праймера (RM-5fw и RM-3bw; см. Дополнительную таблицу 1) при 10 мкМ, 4,5 мкл нуклеазы- свободная вода и 2 мкл разведения 1 нг / мкл матрицы ДНК.Программа термоциклера R. mucilaginosa qPCR состояла из начального 2-минутного шага при 50 ° C, затем еще 2-минутного шага при 95 ° C и 40 циклов 95 ° C в течение 15 секунд и 60 ° C в течение 45 секунд. и окончательная кривая плавления, состоящая из одного цикла 95 ° C в течение 15 секунд, 63 ° C в течение 1 минуты и 95 ° C в течение 15 секунд. Образцы анализировали в двух экземплярах, и концентрацию рассчитывали на основе стандартных кривых, построенных с использованием геномной ДНК C. albicans или R. mucilaginosa (экстрагированной с помощью набора YeaStar Genomic DNA Kit; Zymo Research).ЦПЦР выполняли в системе для ПЦР в реальном времени StepOne Plus (Applied Biosystems) в Snyder Resource Laboratories, Университет Калгари.

Метаболомика

Метаболиты экстрагировали из фекальных гранул и содержимого тонкого кишечника мышей-гнотобиотиков с помощью 50% раствора метанола. Образцы подвергали нецелевому метаболомическому анализу с использованием ЖХ-МС. Данные по метаболомике были получены в Центре исследований метаболомики Калгари, который поддерживается IMC. Общую метаболомику выполняли на масс-спектрометре Q Exactive HF Hybrid Quadrupole-Orbitrap (Thermo-Fisher), соединенном с системой Vanquish UHPLC (Thermo-Fisher).Хроматографическое разделение было достигнуто на колонке Syncronis HILIC UHPLC (2,1 мм × 100 мм × 1,7 мкм; Thermo-Fisher) с использованием бинарной системы растворителей (A + B) при скорости потока 600 мкл / мин. Растворитель A, 20 мМ формиат аммония, pH 3,0, для масс-спектрометрии H 2 O; Растворитель B, ацетонитрил для масс-спектрометрии (Thermo-Fisher) с 0,1% муравьиной кислоты (% об. / Об.). Был использован объем ввода пробы 2 мкл. Масс-спектрометр работал в отрицательном режиме полного сканирования с разрешением 240 000 сканирования от 50 до 750 м / z .

Оценка иммунитета в раннем возрасте

Четырехнедельные мыши F1 (5–8 на группу лечения) были отобраны для оценки иммунитета в раннем возрасте. Мышей анестезировали изофлураном, и кровь брали пункцией сердца после подтверждения отсутствия рефлекса. После сердечной пункции мышей умерщвляли путем смещения шейных позвонков, а срезы селезенки, тощей кишки и толстой кишки немедленно удаляли для проточной цитометрии или измерения цитокинов, как описано ниже. Крови давали возможность свернуться на льду, центрифугировали при 3000 × г в течение 10 минут и использовали супернатант (сыворотку) для определения уровней иммуноглобулина.Титр IgE определяли с помощью IgE BD OptEIA ELISA (BD Biosciences, Сан-Диего, Калифорния, США). Титры IgA, IgG1, IgG2a, IgG2b, IgG3 и IgM определяли с помощью набора для анализа мыши изотипирования Panel 1 (Meso Scale Discovery). Фрагменты тощей кишки и толстой кишки мгновенно замораживали для измерения цитокинов с помощью набора U-Plex T Cell Combo Assay Kit (Meso Scale Discovery).

Иммуномечение и проточная цитометрия

Селезенки были удалены хирургическим путем и обработаны для проточной цитометрии. Селезенки содержали в ледяной среде RPMI 1640 + GlutaMax-I (Thermo-Fisher) и мацерировали в пробирках GentleMACS C (Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Германия).Клеточный мацерат фильтровали через сетчатый фильтр для клеток 100 мкм и эритроциты лизировали в 5 мл 1x буфера для лизиса эритроцитов (BioLegend, Сан-Диего, Калифорния, США). Спленоциты ресуспендировали в ледяной среде для роста клеток, состоящей из среды RPMI 1640 + GlutaMax-I (Thermo-Fisher) с добавлением 10% инактивированной нагреванием фетальной бычьей сыворотки (FBS; Thermo-Fisher), 2000 ед. Пенициллина-стрептомицина (Thermo- Fisher) и 50 мкМ 2-меркаптоэтанола (Thermo-Fisher). Изолированные спленоциты окрашивали фиксируемым красителем жизнеспособности (FVS575V; BD Biosciences) и массивом внутри- и внеклеточных маркеров для характеристики иммунных клеток.Клетки окрашивали на поверхностные маркеры, фиксировали и повышали проницаемость с помощью набора буферов для факторов транскрипции BD (BD Biosciences) и окрашивали на внутриклеточные маркеры. Были использованы следующие антитела: PE-Cy7 против CD19 мыши (клон 1D3; BD Biosciences), PerCP-Cy5.5 против CD11b (M1 / 70; BD Biosciences), APC-H7 против CD8a мыши (53-6,7; BD Biosciences), Alexa Fluor 700 против CD3 мыши (17A2; BD Biosciences), V500 против CD4 мыши (RM4-5; BD Biosciences), Brilliant Violet 421 против CD25 мыши (PC61; BD Biosciences), Brilliant Violet 421 против CD11c мыши (HL3; BD Biosciences), PE-анти-Gata3 (L50-823; BD Biosciences), PE-антимышиный IL-17A (TC11-18h20; BD Biosciences), PE-антимышиный IL-12/23 (C15 .6; BD Biosciences), PE антимышиный F4 / 80 (T45-2342; BD Biosciences), Alexa Fluor 488 антимышиный IL-4 (11B11; BD Biosciences), Alexa Fluor 488 антимышиный FoxP3 (MF23; BD Biosciences), Alexa Fluor 488 антимышиный INF-γ (XmG1.2; BD Biosciences), Alexa Fluor 488 антимышиный IA / IE (M5 / 114.15.2; BD Biosciences), eFluor 660 антимышиный IL-13 (eBio13A; eBioscience , Сан-Диего, Калифорния), APC антимышиный IL-10 (JES5-16E3; BD Biosciences), APC антимышиный IL-6 (MP5-20F3; BD Biosciences) и APC антимышиный CD103 (M290; BD Biosciences). ).Все антитела к поверхностным и внутриклеточным маркерам разводили в 200 раз, за ​​исключением CD8a, который разводили в 100 раз. Образцы анализировали в BD FACSCanto II (BD Biosciences), в основной лаборатории микробных сообществ Николь Перкинс, Институт хронических заболеваний Снайдера, Университет Калгари.

Модель индуцированного OVA воспаления дыхательных путей

Экспериментальную модель OVA на мышах использовали, как описано ранее 48 с модификациями. Мышей F1 (5–10 / группа лечения) системно сенсибилизировали внутрибрюшинно (IP) стерильными 200 мкг OVA степени V (Sigma) и 1.3 мг гидроксида алюминия (Thermo-Fisher) на 7 и 9 неделе после родов. После системной сенсибилизации воспаление дыхательных путей было вызвано интраназальным введением на 10 неделе 50 мкг Low Endo OVA (Уортингтон, Лейквуд, Нью-Джерси, США) в течение 3 дней подряд с последующими 2 днями 100 мкг OVA V степени (Sigma) в стерильный фосфатно-солевой буфер (PBS). Интраназальные исследования проводили у мышей под анестезией изофлураном. Следуя схеме заражения, мышей анестезировали кетамином (200 мг / кг; Ветохинол, Lavaltrie, QC, Канада) и ксилазином (10 мг / кг; Bayer Inc., Mississauga, ON, Canada), и BAL выполняли промыванием 3 × 1 мл PBS + 10% FBS для общего и дифференциального подсчета клеток. Общий подсчет БАЛ проводился на гемоцитометре. Дифференциацию (эозинофилы, нейтрофилы, макрофаги и лимфоциты) проводили на 200 клеток в CytoSpins, окрашенных гематоксилином и эозином (Shandon Cytospin II, Thermo-Shandon, Runcorn, Чешир, Великобритания) на основе стандартных морфологических критериев.

Визуализация данных и статистический анализ

Мы измерили альфа-разнообразие кишечных бактерий, используя индексы Chao1 (богатство) и Шеннона.Непараметрические тесты Манна-Уитни были выполнены для проверки значимых различий в альфа-разнообразии между видами лечения и временными точками. Чтобы учесть потенциальную гетероскедастичность в дисперсии бета-разнообразия сообщества и избежать потери информации из-за разрежения 63 , преобразование стабилизации дисперсии было выполнено до любых статистических тестов 63,64 . Изменения в структуре кишечного бактериального сообщества (бета-разнообразие) оценивали статистически с помощью PERMANOVA 30 и визуализировали с помощью анализа главных координат (PCoA) на основе различий Брея-Кертиса.Для дальнейшего изучения изменений в структуре таксономического сообщества значительные изменения в относительной численности всех видов микробов были протестированы с использованием непараметрических тестов Краскела-Уоллиса, за которыми последовали апостериорные тесты Данна с поправкой Бенджамина-Холмса с поправкой на FDR. Для выявления выбросов были построены прямоугольные диаграммы, а нормальность оценивалась с помощью теста Шапиро-Уилка. Если данные были нормально распределены, использовался параметрический односторонний дисперсионный анализ (ANOVA) с апостериорными тестами Тьюки. Корреляции между объединенными ASV 16S и ITS2 и выявленными иммунологическими особенностями в раннем возрасте оценивали с помощью метода BiCOR с поправкой на FDR.Мы также использовали SGCCA, чтобы понять структуру корреляции между различными измерениями (16S, ITS2 и иммунные характеристики), имея при этом возможность использовать уменьшение размеров, особенно для сильно коррелированных данных метаболомики. Mixomics пакета R 65 был использован для выполнения анализа SGCCA. Данные ITS2 и 16S сначала были изменены на ранги 57 , и все измерения были нормализованы по диапазону. Для продольного анализа статистические тесты для одномерных переменных отклика были выполнены с использованием линейной смешанной модели для повторных измерений, за которой, при необходимости, следовал ANOVA с апостериорным анализом Тьюки.PCA, ANOVA, T-тесты и анализ метаболитов фекалий, происходящих от разных групп мышей, выполняли с помощью Metaboanalyst v.4.0 66 . Во всех тестах значимость была установлена ​​на уровне P <0,05. Все точки данных представляют собой биологические копии. На гистограммах отображается среднее значение со стандартной ошибкой среднего (S.E.M.). Коробчатые диаграммы альфа-разнообразия, относительного обилия и нормализованной концентрации метаболитов отображают медианное значение с петлями и усами, отдаленные точки за концом усов нанесены индивидуально.Нижняя и верхняя петли показывают данные 25-го и 75-го процентилей соответственно. Усы простираются от петли до самого низкого / самого большого значения, которое в 1,5 раза превышает межквартильный диапазон. Графики были построены с использованием RStudio (R Development Core Team, v. 1.1.463), Metaboanalyst версии 4.0 (Xia Lab, Университет Макгилла, Монреаль, КК, Канада) или Prism версии 8.1.2 (GraphPad Software, Ла-Холья, Калифорния). , США). Рисунки 1, 2 и 6 были созданы с использованием диаграмм с сайта BioRender.com (https://biorender.com/). Для определения значимых различий между всеми группами лечения применялись апостериорные сравнения.Из-за большого количества сравнений мы использовали буквенную систему для обозначения статистической значимости. На отсутствие значительных различий между группами указывает, что эти группы имеют одну и ту же букву над столбцами.

Сводка отчетов

Дополнительная информация о дизайне исследований доступна в Сводке отчетов по исследованиям природы, связанной с этой статьей.

Разработка и применение добавок мицелия злаков в пищевом производстве

BIO Web of Conferences 17 , 00046 (2020)

Разработка и применение добавок мицелия злаков в производстве пищевых продуктов

Оксана Блинова * , Алия Троц, Наталья Праздничкова и Екатерина Александрова

Самарский государственный аграрный университет, 446442 Кинель, Самарская область, Россия

* Автор для переписки: Blinova_oks @ mail.ru

Аннотация

Разработка промышленных технологий производства белковых продуктов из растительного сырья — одно из основных направлений увеличения продуктов питания, повышения пищевой и биологической ценности. Перспективны протеиновые добавки из зерновой муки, обогащенной мицелием. При производстве хлеба и паштетов из пшеничной муки оптимальным является использование 3% пшеничной, овсяной, ячменной и пшенной муки, обогащенной мицелием. Качественные показатели йогуртовых напитков можно улучшить, добавив 2% протеиновых добавок на основе овса и гречки.

© Авторы, опубликовано EDP Sciences, 2020

Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License 4.0, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии правильного цитирования оригинальной работы.

1 Введение

Необходимо производить продукты питания с использованием функциональных ингредиентов, пищевых добавок из растительного сырья. Недостатками этих добавок являются ограниченность объемов, низкие функциональные и биологические свойства, ограниченные ресурсы отечественного производства и низкие органолептические свойства готового продукта.Необходимо улучшить биологические и функциональные свойства продукта, удешевить производство за счет недорогих источников отечественного производства. В настоящее время объем пищевых продуктов не может удовлетворить потребность в основных пищевых компонентах, особенно в пищевом белке. По оценкам экспертов, в России дефицит протеина в среднем на душу населения составляет 30%.

Растущий во всем мире дефицит белка требует новых и нетрадиционных источников белка. Производство высокопитательных пищевых белковых продуктов (мясо, молочные продукты, крупы) с добавлением белковых ингредиентов должно быть экономичным и эффективным.

Развитие промышленных технологий производства концентрированных белковых продуктов из растительного сырья — одно из основных направлений увеличения пищевых ресурсов, улучшения питательных качеств и повышения пищевой и биологической ценности пищевых продуктов [1].

В условиях дефицита диетического белка одним из основных направлений пищевой биотехнологии является поиск альтернативных источников белка в ресурсах растительного, микробиологического и грибного происхождения [2].

В связи с этим использование пищевых белковых добавок для производства и обогащения пищевых продуктов является важным вопросом, имеющим большое экономическое значение. Изучение потребительских свойств пищевых продуктов из растительного и животного сырья, содержащих протеиновую добавку на основе зерновой муки, обогащенной мицелием шампиньонов, представляет практический интерес, а экспериментальные исследования влияния этой добавки на качество различных видов пищевых продуктов представляют интерес. промышленное значение.

Применение растительного сырья улучшает органолептические и физико-химические показатели хлеба [3–6], макарон [7–9] и йогуртовых продуктов [10–12].

2 Назначение

Экспериментальное обоснование включает разработку и применение протеиновой добавки на основе муки, обогащенной мицелием. Задачи исследования: 1) определить качество белковых добавок на основе муки, обогащенной мицелием; 2) определить оптимальное влияние продукта на дозировку протеиновой добавки к пище на основе муки, обогащенной мицелием; 3) для оптимизации рецептурных компонентов. Объект исследования — пищевая продукция, содержащая белковые добавки на основе муки, обогащенной мицелием.Исследуется пищевая белковая добавка на основе муки, обогащенной мицелием, и влияние контроля добавки на качество пищевых продуктов.

3 Материалы и методы

Белковая добавка была получена из плодовых тел двудольных грибов и мягкой пшеницы, гречихи, проса, овса и ячменя, обогащенных двудольным мицелием, а также их смесей. Зерно очищали от примесей, промывали, варили 30 минут, сушили. Банки стерилизовали 2 часа при 1050 ° C.Зерно расфасовывали в банки, закрытые крышками. Затем банки помещали в емкость с водой и кипятили дважды по два часа с дневным интервалом. Субстрат стерилизовали, и большинство бактерий погибло. При кипячении вода не должна попадать в жаровни. Был проведен процесс брожения; банки помещали в духовку при температуре 50 … 55 ° С на 30 часов. В каждую банку добавляли 10% мицелия. Банки помещали в термостат с температурой 18 … 200 ° С. Пищевые добавки, полученные из плодовых тел двудольных шампиньонов и зерна, обогащенного мицелием, хранили в сухих прохладных складских помещениях в неповрежденных закрытых банках.

При проведении исследований использовалась пшеничная мука. Соответствует требованиям Российского стандарта «Мука пшеничная. Общие технические условия ». Показатели качества макаронных изделий определялись в соответствии с российским стандартом «Макаронные изделия. Правила и методы определения качества ». Йогуртовый напиток с добавлением диетической белковой добавки и без использования диетической белковой добавки исследовали органолептическими (внешний вид, цвет, структура и текстура, вкус, запах и аромат) и физико-химическими (кислотность, массовые доли жира и белка). ) показателей на третий, пятый и седьмой сутки хранения.Эти показатели определялись по общепринятым методикам.

Для приготовления хлеба использовался непарный способ приготовления теста. Производство хлеба осуществлялось испытательным лабораторным методом выпечки в соответствии с российским стандартом «Мука пшеничная хлебопекарная. «Тест метода выпечки хлеба» с последующей его оценкой по показателям по общепринятой методике. Основные показатели качества макаронных изделий определены в соответствии с российским стандартом «Макаронные изделия.Правила приемки и методы определения качества. «Йогуртовый напиток с добавлением диетической белковой добавки и без использования диетической белковой добавки был исследован на органолептические (внешний вид, цвет, структура и текстура, вкус, запах и аромат) и физико-химические (кислотность, массовая доля жира, массовая доля белка) показатели момента развития; на третьи, пятые и седьмые сутки хранения. Определение этих показателей проводилось в соответствии с нормативной документацией по общепринятым методикам.

Обогащение пищевых продуктов проводилось по следующим направлениям: повышение биологической ценности при применении пищевой добавки на основе зерновой муки, обогащенной мицелием.

В настоящее время методом поверхностной ферментации производится около 1,5 тыс. Тонн мицелия в год, а глубинным способом — 2 тыс. Тонн. Органические вещества мицелия состоят из углеводов и азотистых веществ (25 … 30%). Кроме того, мицелий содержит свободные аминокислоты, другие органические кислоты, жиры, спирты, фосфолипиды, ферменты, витамины и другие вещества.

Использование компонентов, придающих хлебу лечебно-профилактические свойства, позволяет решить проблему профилактики и лечения заболеваний, связанных с дефицитом определенных веществ. Употребление в пищу белковых добавок благоприятно сказывается на потребительских свойствах хлеба, увеличивает содержание белка. Изучено влияние протеиновой добавки к пище на основе муки из мягкой пшеницы, гречки, проса, овса и ячменя, обогащенной мицелием шампиньонов, на качество хлеба.Добавка добавлялась при замесе теста в сухом виде в количестве 3%.

Схема опыта включала шесть вариантов: без использования нетрадиционного сырья (контрольный вариант) и с применением белковой добавки на основе муки мягкой пшеницы, гречки, проса, овса и ячменя, обогащенных мицелием в количестве 3%.

Разработано большое количество различных йогуртовых напитков, обогащенных витаминами и различными добавками, улучшающими пищевую ценность.Известно, что кисломолочные продукты, в том числе йогуртовый напиток, являются высокотехнологичными и удобными продуктами для создания новых видов функционального питания для людей разных возрастных категорий. Изучено влияние пищевых белковых добавок на основе муки из мягкой пшеницы, гречки, проса, овса и ячменя, обогащенных мицелием шампиньонов, на качество йогуртового напитка. Добавка добавлялась в количестве 2% от массы основного сырья. Затем было проведено интенсивное перемешивание.

Все эксперименты проводились 3–4 раза. В таблицах приведены дополнительные данные для каждого эксперимента. Обсуждаются только те результаты, которые можно воспроизвести в каждом эксперименте. Отклонения не превышали 1-3%.

4 Результат

Для производства грибной муки использовали сушеные тела шампиньонов. Они соответствовали требованиям ТУ 61 РФ 01-172-94 «Грибы сушеные. Технические условия ». Внешний вид — пластины упругие, слегка хрупкие, серого цвета; вкус и запах — типичный для сушеных грибов, без постороннего запаха.Химический состав зерна, используемого для обогащения мицелием, представлен в таблице 1.

Содержание сухого вещества 88,04 … 88,94%. Наибольшее количество сырого протеина в сухом веществе наблюдалось в зерне овса (14,43%), наименьшее — в зерне проса (9,69%). Содержание массовой доли клетчатки в зернах пшеницы составляло 4,92%; в зернах ячменя, овса и проса — 7,59-8,81%. Массовая доля жира составляла 3,38-4,12%, а содержание сырой золы 4,30-8,21%.

Мицелий имеет однородную рассыпчатую структуру, без влажных и уплотненных участков, пятен; мицелий имел характерный запах.Субстратом для производства мицелия служили зерна пшеницы, овса, ячменя и проса. Внешний вид мицелия зерна был следующим: зерна с мицелием имели однородную рассыпчатую структуру. Каждое зернышко покрыто высококачественным мицелием; мицелий проник в зерно. Окрас белый без пятен зеленого, черного, желтого и других цветов. Запах грибной приятный, не кисловатый и не затхлый. Массовая доля влаги в зерне мягкой пшеницы составила 43,0%, в зерне овса — 43,0%, в зерне ячменя — 42,7%, в зерне — 43,0%.0% в зерне проса. Концентрация ионов водорода составляла от 6,1 до 6,3 единиц pH.

Пищевая протеиновая добавка на основе культивируемых грибов и смеси мицелия зерна представляла собой однородный сухой порошок без примесей, не растворимый в воде. Цвет пищевых белковых добавок соответствовал цвету использованного зерна: светло-серый или светло-коричневый.

Белковая добавка имела серый цвет с коричневым оттенком. Запах был типичным для этого сырья, без плесени и плесени.Добавка имела ярко выраженный приятный грибной запах. Вкус пищевых протеиновых добавок был мучнистым, без посторонних привкусов, не кисловатый, не горький.

Массовая доля влаги 8,05 … 17,88%. Кислотность в зависимости от используемого сырья составляла 2,6–3,4 единицы pH. Наибольшее значение этого показателя было у добавки, изготовленной из 100% грибной муки и добавок из смеси 50% грибной и 50% муки мягкой пшеницы, обогащенной мицелием (3,4 и 3,3 единицы pH соответственно (табл.2).

В ходе исследований определялась водосвязывающая и жиросвязывающая способность пищевых добавок. В зависимости от используемого сырья: водосвязывающая способность 700 … 800%; жиросвязывающая способность 190 … 230%. Таким образом, эффективное соотношение воды и пищевых белковых добавок составляет 1: 7 … 1: 8. Массовая доля сухого вещества составила 87,12 … 91,95% (таблица 3).

Массовая доля белка варьировала от 10,79 до 26,75% и зависела от используемого сырья. Содержание массовой доли сырой клетчатки, сырого жира и золы также варьировалось по вариантам эксперимента в зависимости от вида и количества компонентов, входящих в состав пищевых белковых добавок.

Внешний вид хлеба из пшеничной муки с диетической протеиновой добавкой на основе зерновой муки, обогащенной мицелием, в вариантах опыта несколько отличался. Хлеб из пшеничной муки без БАД на белковой основе имел ровную поверхность, цвет корочки — светло-коричневый.

Корка хлеба из пшеничной муки с добавкой к пище на основе белой пшеницы, овса, ячменя и проса была выпуклой (5 баллов), а у хлеба из зерна гречихи — слегка выпуклой (3 балла).Поверхность корки хлеба из пшеничной муки была плоской, за исключением хлеба, полученного с добавлением муки из гречихи, обогащенной мицелием. Поверхность потрескалась (2 балла). Цвет корочки варьировал от светло-коричневого (4 балла) до коричневого с красноватым оттенком (5 баллов).

Использование пищевой белковой добавки оказало значительное влияние на характеристики крошки белого пшеничного хлеба. Цвет хлебной крошки менялся в зависимости от вида добавок.Хлеб из пшеничной муки имел цвет мякиша белого цвета (5 баллов). Хлеб из пшеничной муки с добавлением пшеничной, ячменной, овсяной и пшенной муки имел белый цвет мякиша с желтоватым оттенком (5 баллов). Хлеб из пшеничной муки с добавлением мягкой пшеничной, ячменной и пшенной муки имел мелкую ажурную однородную тонкостенную структуру мякиша (5 баллов). Применение добавки из зерен овса и гречихи привело к образованию мелкой, тонкостенной, неровной структуры мякиша (4 балла). Эластичность мякиша хлеба из пшеничной муки и хлеба с добавлением муки из мягкой пшеницы, ячменя, овса и проса, обогащенная мицелием, была мягкой, шелковистой, легко восстанавливала первоначальную структуру (5 баллов).Готовый продукт из пшеничной муки с гречишной мукой, обогащенной мицелием, имел мягкий нежный мякиш (4 балла).

Вкус хлеба из пшеничной муки с добавлением пищевой добавки был типичным для данного вида хлеба со вкусом исследуемого компонента.

Средняя оценка хлебобулочных изделий из пшеничной муки составила 4,9 балла. Наивысший средний балл был у хлеба из пшеничной муки с добавлением мягкой пшеницы и пшенной муки, обогащенной мицелием — 5.0 баллов. Наименьший балл получил хлеб, произведенный с добавлением протеиновой добавки из гречишного зерна (3,1 балла).

Объемный выход хлеба колебался от 460 до 520 см 3 . Наибольшее значение данного показателя получено для хлеба из пшеничной муки с применением пищевых белковых добавок на основе муки проса, обогащенной мицелием (260 см 3 ). Пористость хлеба из пшеничной муки увеличивалась при употреблении белковых добавок. Кислотность хлеба из пшеничной муки — 2.4-3 градуса (таблица 4).

Массовая доля сырого протеина 17,51 … 18,50%. Массовая доля сырого жира составляла 1,60 … 2,00%, а массовая доля клетчатки 0,87 … 2,66% (таблица 5).

Паста без запаха и вкуса. Продукты из пшеничной муки без добавок и с пищевыми белковыми добавками на основе муки из зерна, обогащенной мицелием, после варки не слипались.

Наивысший балл получили продукция, изготовленная по традиционной технологии (35 баллов) и продукция с добавками на основе зерна мягкой пшеницы и ячменя (34 балла).Физико-химические показатели качества макаронных изделий из пшеничной муки с использованием мицелия представлены в таблице 6.

Влажность макарон из пшеничной муки составляла 7,9 … 8,0%. При использовании пищевой добавки кислотность продуктов повышалась на 0,2 … 0,5 градуса. Продолжительность варки зависела от типа используемых добавок. Сохранность продуктов составила 100,0%. Перенос твердых частиц в воду для варки составил 4,7… 5,7%.

Йогуртовый напиток с добавкой пищевого белка на основе зерна, обогащенного мицелием, отличался по цвету, вкусу и консистенции.Результаты органолептической оценки показали, что контрольный образец и образцы с применением пищевых белковых добавок имели однородную консистенцию. Цвет контрольного напитка — молочно-белый, однородный. Образцы с протеиновой добавкой были светлыми сливками или сливками. Контрольный йогуртовый напиток имел молочно-белый цвет и чистый кисломолочный умеренно сладкий вкус. Йогуртовые напитки с применением протеина представляли собой легкие сливки с включениями добавки. Йогуртовый напиток, полученный с использованием диетической белковой добавки на основе пшенной муки, обогащенной мицелием, и йогуртовый напиток, полученный с использованием белковой добавки на основе гречневой муки, обогащенной мицелием, были сливками.Консистенция контрольного йогуртового напитка была однородной, умеренно вязкой, кремообразной, с разорванным сгустком. Продукт с протеиновой добавкой был однородным, умеренно вязким, кремообразным, с разорванным сгустком. Йогуртовый напиток с протеиновой добавкой на основе ячменной муки, обогащенной мицелием, был более вязким.

На третьи сутки хранения без изменения цвета, повышения кислотности. В последующие дни хранения запаха, вкуса и аромата обнаружено не было. На пятый день при хранении были обнаружены изменения цвета, запаха, вкуса и аромата, контрольный йогуртовый напиток имел вкус контрольного образца, а йогуртовый напиток с добавкой пищевого белка.

Массовая доля белка составила 3,32 … 3,69%. Массовая доля жира составляла 3,20… 3,30% (табл. 7). Кислотность йогуртового напитка составила 94 ° Т, на 3-й день — 96 … 102 ° Т, на 5-й день — 99 … 110 ° Т. На 7-й день кислотность повысилась до 108 … 118 ° Т. На седьмой день кислотность повышается в пределах нормы.

Результаты дегустации показали, что наибольшее количество баллов получил йогуртовый напиток, произведенный без использования диетической белковой добавки (8.2 балла) и с применением протеиновой добавки на основе ячменной и гречневой муки, обогащенной мицелием шампиньонов (8,1 и 8,3 балла соответственно).

Таблица 1.

Химический состав зерна, используемого для производства протеиновых добавок

Таблица 2.

Физико-химические и функционально-технологические показатели качества протеиновой добавки к пище на основе шампиньона двустворчатого и смеси мицелия зерна

Таблица 3.

Химический состав протеиновой добавки к пище на основе шампиньонов двустворчатых и смеси мицелия злаков

Таблица 4.

Физико-химические показатели качества хлеба с добавками на основе муки, обогащенной мицелием шампиньона двустворчатого

Таблица 5.

Химический состав хлеба с добавками на основе зерновой муки, обогащенной мицелием шампиньона двустворчатого

Таблица 6.

Физико-химические показатели качества макаронных изделий с добавками на основе муки, обогащенной мицелием шампиньона двустворчатого

Таблица 7.

Физико-химические показатели качества йогуртового напитка в зависимости от применения добавок на основе муки из зерна, обогащенной мицелием шампиньонов двушампиньонных

5 Обсуждение

Использование белковых продуктов требует новых подходов и решений, пересмотра ассортимента, рецептур и технологий, представления о критериях качества и пищевой ценности.Перспективными являются разработка и внедрение новых пищевых технологий, направленных на производство продуктов питания с высокой биологической ценностью с учетом потребностей различных социальных, профессиональных и возрастных групп населения, в том числе в лечебно-профилактических продуктах. Удачным решением этой проблемы является использование растительных ресурсов, а именно дикорастущих и культурных грибов, выращенных в условиях Самарской области, а также зерна, обогащенного мицелием шампиньонов.

В целом пищевые добавки обладают хорошими органолептическими, функциональными и технологическими показателями качества и высоким содержанием белка.

Сравнение химического состава муки мягкой пшеницы из грибов и пшеничной муки показало, что содержание белка в муке из грибов больше на 12,44 и 14,64%, жира — на 12,44 и 14,64%, а золы — на 6,41 и 7,61% по сравнению с мукой из мягкой пшеницы. порошок. Добавка содержит на 3,1% больше белка, на 0,54% больше жира, на 1,67% меньше клетчатки и на 2,69% меньше золы. Содержание массовой доли белка в ячменной муке, обогащенной мицелием, на 3,55% выше, чем в ячменной муке. Содержание массовой доли жира, клетчатки и золы в данной пищевой добавке меньше по сравнению с зерном ячменя на 0.47; 5,16 и 3,08% соответственно.

Сравнивая химический состав зерна овса и муки из зерна овса, обогащенного мицелием, можно видеть, что содержание массовой доли белка в пищевой белковой добавке на 0,78% выше, чем в зерне овса. Белковая добавка на основе пшенной муки, обогащенная мицелием, содержит на 1,1% больше протеина, чем пшенная мука.

Количество белка в пшеничной муке, обогащенной мицелием, составляет 25,33%, в овсяной муке, обогащенной мицелием, — 26.75%, а в пшенной муке, обогащенной мицелием, — 25,34%. Наибольшее количество клетчатки было в овсяной муке, обогащенной мицелием (10,25%). Наибольшее содержание массовой доли золы отмечено в ячменной муке с мицелием (20,02%).

Применение протеиновой добавки на основе пшеничной, ячменной и пшенной муки, обогащенной мицелием в количестве 3%, улучшает качественные показатели пшеничного хлеба и увеличивает содержание сырого протеина. Хлеб имеет приятный вкус и аромат, нормальный объем и пористость.

Белковые добавки оказали значительное влияние на внешний вид и характеристики макаронных изделий из пшеничной муки. С увеличением количества пищевых протеиновых добавок в макаронных изделиях из пшеничной муки содержание протеина увеличивалось.

Йогуртовый напиток, полученный с использованием белковой добавки на основе ячменной муки, обогащенной мицелием, и йогуртный напиток, полученный с использованием пищевых белковых добавок на основе гречневой муки, обогащенной мицелием, имели наилучшие органолептические и физико-химические характеристики.Эти образцы имели приятный запах, гармоничный вкус; при хранении изменений органолептических показателей не наблюдалось; физико-химические показатели в пределах нормы.

6 Заключение

Перспективными являются протеиновые добавки на основе зерновой муки, обогащенные мицелием шампиньонов.

Протеиновые добавки из пшеничной, овсяной, ячменной и миттельской муки, обогащенные мицелием до 3%, улучшают качество хлеба.

При использовании нетрадиционного сырья для производства макаронных изделий можно использовать добавки пшеничной и ячменной муки, обогащенные мицелием в количестве 3%.Это улучшает потребительские свойства макаронных изделий.

При использовании протеиновой добавки в производстве йогуртовых напитков наилучший эффект достигается при использовании ячменной и гречневой муки, обогащенной мицелием в количестве 2%. Эти рекомендации позволят изготовить продукт с лучшими потребительскими свойствами.

Список литературы

  • П. Гелинас, К. Дэвид, Энциклопедия продовольственного зерна 4, 154–161 (2016) [CrossRef] [Google Scholar]
  • ИКС.Лу, М. А. Бреннан, Л. Сервенти, Дж. Лю, К. С. Бреннан, Food Chemistry 64, 199–209 (2018) [Google Scholar]
  • Л. Теббен, Ю. Шен, Ю. Ли, Тенденции в пищевой науке и технологиях 81, 10–24 (2018) [Google Scholar]
  • Л.Б. Фендри, Ф. Чаари, М. Маалул, Ф. Каллель, Д. Гриби-Эй, LWT 73, 584–591 (2016) [CrossRef] [Google Scholar]
  • М.Sajdakowska, J. Gcbski, S. Zakowska-Biemans, M. Jezewska-Zychowicz, Public Health 167, 78–87 (2019) [CrossRef] [PubMed] [Google Scholar]
  • Р.Кода, Дж. Варис, М. Верни, К. Г. Риццелло, К. Катина, LWT Food Science and Technology 82, 296–302 (2017) [CrossRef] [Google Scholar]
  • Р.Чиккоритти, Ф. Ноценте, Д. Сгрулетта, Л. Газза, LWT 101, 10–16 (2019) [CrossRef] [Google Scholar]
  • С.Спинелли, Л. Падалино, К. Коста, М. А. Дел, А. Конте, J. of Cleaner Production 215, 985–991 (2019) [CrossRef] [Google Scholar]
  • В.К. Р. Сурасани, А. Сингх, А. Гупта, С. Шарма, LWT 111, 443–448 (2019) [CrossRef] [Google Scholar]
  • К.Дас, Р. Чоудхари, К. А. Томпсон-Уитрик, LWT 108, 69–80 (2019) [CrossRef] [Google Scholar]
  • Э.Мохаммади-Гураджи, С. Сулейманян-Зад, М. Гиачи, LWT 102, 230–236 (2019) [CrossRef] [Google Scholar]
  • Н.Томич, Б. Дойнов, Й. Миочинович, И. Томашевич, З. Вуйчич, LWT 80, 59–66 (2017) [CrossRef] [Google Scholar]

Все таблицы

Таблица 1.

Химический состав зерна, используемого для производства протеиновых добавок

Таблица 2.

Физико-химические и функционально-технологические показатели качества протеиновой добавки к пище на основе шампиньона двустворчатого и смеси мицелия зерна

Таблица 3.

Химический состав протеиновой добавки к пище на основе шампиньонов двустворчатых и смеси мицелия злаков

Таблица 4.

Физико-химические показатели качества хлеба с добавками на основе муки, обогащенной мицелием шампиньона двустворчатого

Таблица 5.

Химический состав хлеба с добавками на основе зерновой муки, обогащенной мицелием шампиньона двустворчатого

Таблица 6.

Физико-химические показатели качества макаронных изделий с добавками на основе муки, обогащенной мицелием шампиньона двустворчатого

Таблица 7.

Физико-химические показатели качества йогуртового напитка в зависимости от применения добавок на основе муки из зерна, обогащенной мицелием шампиньонов двушампиньонных

Поиск — Самарский научный журнал

Выпуск

Название

Авторы

Влияние аридизации на характеристики субстрата и биотопическое распределение видов грибов Polyporus s.л. Род на юго-востоке Западной Сибири

Влияние условий окружающей среды на накопление вторичных метаболитов лишайников рода Cladonia и семейства Parmeliaceae

Моделирование экологической ниши и особенностей распространения копробионтных грибов в Азии на примере Cyathus stercoreus

Микобиота верхнего яруса подстилки соснового леса в парках Сургута в экологической оценке антропогенного воздействия на эти территории

Воздействие химикатов (формальдегид и толуол) на почвенные микроорганизмы чернозема выщелоченного.

Биостойкость синтетических полимерных материалов — полиэтилена, полипропилена и поликарбоната — в условиях Сургута.

Реакция грибов-макромицетов на антропогенные нарушения

Изучение первичной продуктивности лишайниковых эпигейных грибов в сосняках Костромской области.

Субстратная специализация и распространение грибов рода Trametes на юго-востоке Западной Сибири

Экологическое разнообразие некоторых ресурсных лекарственных грибов рода Pleurotus Новосибирской области

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ПОЧВ КАШТАНА ЮГО-ЗАПАДНОГО ЗАБАЙКАЛА

Микробиологический мониторинг антропогенно-преобразованных почв.

1-12 из 12 элементов

Советы по поиску:
  • Поисковые запросы нечувствительны к регистру
  • Общие слова игнорируются
  • По умолчанию возвращаются только статьи, содержащие всех терминов в запросе (т.е.е., подразумевается И )
  • Объедините несколько слов с ИЛИ , чтобы найти статьи, содержащие любой термин; например, образование ИЛИ исследования
  • Используйте круглые скобки для создания более сложных запросов; например, архив ((журнал ИЛИ конференция) НЕ тезисы)
  • Найдите точную фразу, заключив ее в кавычки; например, «публикация в открытом доступе»
  • Исключите слово, поставив перед ним префикс или НЕ ; е.г. онлайн -политика или онлайн НЕ политика
  • Используйте * в термине как подстановочный знак для соответствия любой последовательности символов; например, soci * мораль будет соответствовать документам, содержащим «социологические» или «социальные»
Власенко В.А., Власенко А.В., Турмунх Д.
Корчиков Э.С., Зеленская Е.А., Халикова Л.В., Турченко П.С.
Власенко В.А., Турмунх Д., Назын С.Д., Власенко А.В.
Мантрова М.V.
Ильина Н.А., Фуфаева Т.В., Казакова Н.А., Касаткина Н.М., Вилкова Е.А.
Мантрова М.V.
Сафонов М.А.
Малахова К.V.
Власенко В.А.
Власенко В.А., Асбаганов С.В., Власенко А.В.
Буянтуева Л.Б., Никитина Е.П.
Симонова Е.В., Максимова Е.Н.

Новые данные об агарикоидных грибах (Basidiomycota) Урала

Впервые для Урала зарегистрировано 36 видов агарикоидных грибов, в том числе 15 новых для Республики Коми и 19 новых для Свердловской области.Встречались в основном в естественных местообитаниях: горных тундрах (3 вида), горных лесотундрах (3), северных бореальных лесах гор и их предгорьях (12), среднебореальных лесах гор (1), южных бореальных лесах. бореальные леса предгорья Урала (2), гемибореальные широколиственно-хвойные леса (4), гемибореальные сосновые и березовые леса предгорий Урала (1), лесостепь (1), северные и южные бореальные леса (1). Новые записи о Cantharellopsis prescotii и Hydropus subalpinus расширяют данные об их распространении на восток до Урала, а остальные заполняют пробелы между местонахождениями в Европе и Азии.Десять видов отмечены только в антропогенных местообитаниях городских территорий.


Ключевые слова: агарикоидных базидиомицетов, разнообразие, географическое распространение, редкие виды, Урал, Свердловская область, Республика Коми, Россия

Ширяева О.С., Паламарчук М.А. 2019. Новые данные об агарикоидных грибах (Basidiomycota) Uralis. Новости системики низких растений 53 (1): 89106. https://doi.org/10.31111/nsnr/2019.53.1.89

Бассо М. Т.1999. Fungi Europaei. Lactarius Pers. Алассио: 844 стр.

Булах Е.М., Васильева Н.В., Ерофеева Е.А. 2010. Первые данные о грибах Basidiomycetes Буреинского заповедника. Микология и фитопатология 44 (2): 8998.

Candusso M., Lanzoni G. 1990. Fungi Europaei. Vol. 4. Лепиота с. л. Саронно: 743 стр.

Чибилев А.А., Чибилев А.А. 2012. Естественное районирование Урала по широтным поясам, высотным поясам и вертикальной дифференциации ландшафтов. Известия Самарского научного центра РАН 14 (1): 16601665. (на рус. С англ. Резюме).

Десятова О.А. 2007. Агарикоидные базидиомицеты Оренбургской области. Микология и фитопатология 41 (1): 311. (на русск. С англ. Аннотация).

Десятова О.А. 2008. Агарикоидные базидиомицеты Оренбургской области. канд. Дисс. [Агарикоидные базидиомицеты Оренбургской области. Кандидат Дисс.]. Москва: 160 с. (На рус. Яз.).

Филиппова Н. 2018. Справочник по грибам Югорского государственного университета. Версия 1.2. Биологическая коллекция Югорского государственного университета (БЦ ЕГУ). Набор данных о встречаемости. Https://doi.org/10.15468/g4bk6h (Дата обращения: 10 сентября 2018 г. через GBIF: https: //www.gbif.org/occurrence/1932392195).

Филиппова Н.В., Булёнкова Т.М. 2017. Разнообразие более крупных грибов в окрестностях Ханты-Мансийска (средняя тайга Западной Сибири). Динамика окружающей среды и глобальное изменение климата 8 (1): 1324.https://doi.org/10.17816/edgcc8113-24

Филиппова Н.В., Булёнкова Т.М., Лапшина Е.Д. 2015. Набеги мясистых грибов в окрестностях полевой станции Мухрино ЕГУ (Западная Сибирь). Динамика окружающей среды и глобальное изменение климата 6 (1): 331.

Flora Agaricina Neerlandica. Критические монографии по семействам агариков и болетий, встречающихся в Нидерландах. Vol. 3. Tricholomataceae. 1995. Роттердам Брукфилд: 183 стр.

Флори, лихено- и микобиоты особо охраняемых ландшафтов бассейнов рек Косю и Большая Сыня ( Приполярный Урал, НП Югыд ва ) [Флора, лихено- и микобиота особо охраняемых ландшафтов бассейна реки Косю и Большого Синя Парк Югыд Ва)].2016. Москва: 483 с. (На рус. Яз.).

Funga Nordica: роды агарикоидов, болетовидных, клавариоидных, цифеллоидных и гастроидных. 2012. Копенгаген: 1083 с.

Горбунова И.А. 2015. Новое о биоте агарикоидных и афиллофороидных базидиомицетов Республики Тыва. Turczaninowia 18 (4): 9196. (на русск. С англ. Резюме). Https://doi.org/10.14258/turczaninowia.18.4.12

Горчаковский П.Л. Покрова на пример Урала и прилегающих равнин. География и динамика растительного покрытия. Труды Института биологии УФАН СССР. Вып. 42 [География и динамика растительного покрова. Известия Института биологии УБАН СССР. Vol. 42]. Свердловск: 332.

Халама М., Рутковски Р. 2016. Meottomyces disimulans (Agaricales, Basidiomycota), новый для Польши. Польский ботанический журнал 61 (1): 167172. https://doi.org/10.1515/pbj-2016-0006

Hausknecht A., Klofac W., Krisai-Greilhuber I.1997. Die Gattung Hydropus в Österreich. Österreichische Zeitschrift für Pilzkunde 6: 181210. (на нем.).

Хосоя Т. 2018. Образцы грибов Национального музея природы и науки (TNS). Национальный музей природы и науки, Япония. Набор данных о встречаемости. Https://doi.org/10.15468/y8xhm7 (Дата обращения: 27 XI 2018 г. через GBIF: https: //www.gbif.org/occurrence/18252).

Index Fungorum. 2018. https://www.indexfungorum.org (дата обращения: 10XI 2018 г.).

Иванов А.И. 1983. К флоре арариковых грибов Пензенской области. III [К флоре агарических грибов Пензенской области. III]. Новости системики нижних растений 20: 7683.

Ивойлов А.В., Большаков С.Ю. 2011. Макромицы Республики Мордовия. 2. Агарикоидные грибы. Макромицеты Республики Мордовия. 2. Агарикоидные грибы. Boletales, Polyporales, Russulales]. Вестник Мордовского университета 4: 162166.(На рус. Яз.).

Капитонов В. И. 2008. Дополнение к Списку макромицетов Удмуртии. Вестник Удмуртского университета. Серия Биология. Науки о Земле 2: 131138. (на русск. С англ. Резюме).

Каратыгин И.В., Нездоиминого Е.Л., Новожилов Ю.К., Журбенко М.П. 1999. Грибы российской Арктики. Контрольный список. Санкт-Петербург: 212 с. (На рус. С англ. Аннотация).

Коваленко. . 1989. Определитель грибов СССР. Справочник грибов СССР. Порядок Hygrophorales .Заказать Hygrophorales]. Ленинград: 165 с. (На рус. Яз.).

Коваленко. ., Малышева Е. Ф., Морозова О. В. 2012. Род Camarophyllopsis в России: новые записи и новые виды C. albofloccipes. Микология и фитопатология 46 (1): 5466. (на русск. С англ. Аннотация).

Кренцлин Ф. 2005. Грибы Швейцарии: вклад в изучение грибной флоры Швейцарии. Vol. 6: Russulaceae. Люцерн: 317 стр.

Красная книга Кировской области: животные, растения, грибы .2014. Киров: 336 с. (На рус. Яз.).

Красная книга Ленинградской области: Объекты растительного мира . 2018. Санкт-Петербург: 848 с. (На рус. Яз.).

Кудашова Н. Н., Гашков С. И., Вайшля О. Б. 2016. Редкие и охраняемые виды грибов Томской области. Вестник Томского Государственного Университета. Биология 4 (36): 79109. (на русск. С англ. Аннотация).

Куликов П.В. 2005. Конспект флоры Челябинской области ( сосудистые растения ).Екатеринбург, Миасс: 537 с. (На рус. Яз.).

Куликов П.В., Золотарева Н.В., Подгаевская Е.Н. 2013. Эндемичные растения Урала во флоре Свердловской области . Екатеринбург: 612 с. (На рус. Яз.).

Ли О. 2017. Гербарий Университета Британской Колумбии (UBC) Коллекция грибов. Версия 14.2. Университет Британской Колумбии. Набор данных о встречаемости. Https://doi.org/10.5886/h5px7g4b (Дата обращения: 27 XI 2018 г. через GBIF: https: // www.gbif.org/occurrence/918991125).

Леса Республики Коми [Леса Республики Коми]. 1999. Москва: 332 с.

Малышева Е.Ф., Светашева Т.Ю. 2011. Редкий и заслуживающий внимания вид агариков Западного Кавказа. Fungi non delineati. Парс LXI. Алассио: 104 стр.

Малышева В. Ф., Малышева Е. Ф. 2008. Высшие базидиомицеты лесных и луговых сообществ Жигулей. Москва; Санкт-Петербург: 242 с. (На рус.с англ. резюме).

Марина Л.В. 2006. Агарикоидные базидиомицеты Висимского заповедника ( Средний Урал ). Санкт-Петербург: 102 с. (На рус. С англ. Аннотация).

Морозова О.В. 2012. Новые данные об агарикоидных базидиомицетах Новгородской области. Полевой сезон 2011: Исследования и природоохранные действия на особо охраняемых природных территориях Новгородской области .Великий Новгород: 58..

Морозова О. В., Нурделоос М. Э., Вила Дж. 2014. Entoloma Подрод Leptonia в умеренно-северной Евразии: к концепции филогенетического вида. Persoonia 32: 141169. https://doi.org/10.3767/003158514X681774

Мухутдинов О.И. 2007а. Грибы рода Руссула чел. заповедник Вишерский (Пермский край) [Грибы рода Russula Pers. в Вишерском заповеднике (Пермский край)]. Вестник Тюменского государственного университета 6: 193195.

Мухутдинов О.И. 2007б. Разнообразие грибов рода Cortinarius (Перс.) С. Ф. Грей заповедника Вишерский (Пермский край). Естественные и технические науки 5: 145147..

Наумов Н. 1915. Грибы Урала [Уральские грибы]. Записки Уральского общества любителей естествознания 35: 148.(На рус. Яз.).

Нездоиминого Э. Л. 1996. Определитель грибов России: Порядок Агариковые. Т. 1. Семейство Паутинниковые . Справочник грибов России: Заказ Agaricales. Вып. 1. Семейство Cortinariaceae ]. Санкт-Петербург: 408 с. (На рус. Яз.).

Определитель высших растений Башкирской АССР. Т. 1. Сем. OnocleaceaeFumariaceae [Справочник растений Башкирской АССР. Vol. 1. Фам. OnocleaceaeFumariaceae]. 1988. Москва: 316 с. (На рус. Яз.).

Овеснов С.А. 1997. Конспект флоры Пермской области . Пермь: 252 с. (На рус. Яз.).

Паламарчук М.А. 2012. Агарикоидные базидиомицеты Печоро-Илычского заповедника ( Северный Урал, ). Сыктывкар: 152 с. (На рус. Яз.).

Паламарчук М.А. 2016а. Агарикоидные базидиомицеты северной части национального парка Югыд ва (Приполярный Урал). Микология и фитопатология 50 (1): 2434.(На рус. С англ. Аннотация).

Паламарчук. . 2016b. Таксономическая и трофическая структура биоты агарикоидных базидиомицетов горных тундр Приполярного Урала. Вестник Томского государственного университета. Биология 3 (35): 6073. (на русск. С англ. Аннотация).

Паламарчук М.А. 2017. Агарикоидные базидиомицеты Донского заповедника (Республика Коми). Вестник Института биологии Коми НЦ УрО РАН 2: 814.

Паламарчук.., Кириллов Д.В. 2017. Агарикоидные базидиомицеты г. Сыктывкара и его окрестностей (Республика Коми). Микология и фитопатология 51 (3): 137146. (На рус. С англ. Аннотация).

Паламарчук. ., Кириллов Д.В. 2018. Новые данные об агарикоидных базидиомицетах национального парка Югыд ва (Приполярный и Северный Урал). Вестник Института биологии Коми НЦ УрО РАН 1 (33): 1321. (на русск. С англ. Аннотация).

Переведенцева Л.Г. 2008. Конспект агарикоидных базидиомицетов Пермского края .Пермь: 86 с. (На рус. Яз.).

Переведенцева Л.Г., Боталов В.С., Шишигин А.С. 2017. Мониторинг охраняемых грибов Пермского края: Lactarius volemus (Fr.) Fr. Молочая. Вестник Пермского университета. Серия Биология 1: 3742.

Переведенцева Л.Г., Шилкова Т.А., Боталов В.С. 2011. Новые виды агариков для Пермского края. Естественные и технические науки 2 (52): 134136. с англ.резюме).

Плутоф. 2018. Музей естественной истории Тартуского университета. Версия 1.20. Набор данных о встречаемости. Https://doi.org/10.15156/bio/587444 (Дата обращения: 10XI 2018 г. через GBIF: https: //www.gbif.org/occurrence/1658351529).

Почвы и растительность долины р. Большой Салым ( Обь-Иртышское междуречье ). 2014. Сургут: 172 с. (На рус. Яз.).

Попов Е.С., Морозова О.В., Коткова В. М., Новожилов Ю. К., Журбенко М. П., Змитрович И. В., Коваленко А. Е. 2007. Предварительный перечень грибов и миксомицетов Ленинградской области. Санкт-Петербург: 56 с.

Самгина Д. И. 1981. Флора споровых растений Казахстана. Т. XIII ( 1 ). Агариковые грибы ( Agaricales ) [Флора скрытогамных растений Казахстана. Vol. XIII (1). Грибы-агарикоиды (Agaricales). Алма-Ата: 272 с. (На рус. Яз.).

Самгина Д.I. 1985. Флора споровых растений Казахстана. Т. XIII ( 2 ). Агариковые грибы ( Agaricales ) [Флора скрытогамных растений Казахстана. Vol. XIII (2). Грибы-агарикоиды (Agaricales). Алма-Ата: 272 с. (На рус. Яз.).

Саркина И. С. 2011. Аннотированный список макромицетов Крымского природного заповедника. Научные записки природного заповедника Мыс Мартьян 2: 642.(На рус. Яз.).

Сарнари М. 2005. Monografia illustrata del Genere Russula в Европе. Т. 2. Тренто: 1567 с.

Сарычева Л.А., Светашева Т.Ю., Булгаков Т.С., Попов Е.С., Малышева В.Ф. 2009. Микобиота Липецкой области. Воронеж: 287 с. (На рус. С англ. Аннотация).

Ширяева О.С. 2015. История изучения и видовое богатство агарикоидных грибов Свердловской области. Вестник Оренбургского государственного педагогического университета 4 (16): 4958.(На рус. С англ. Аннотация).

Ширяева О.С., Малышева Е.Ф. 2018. Роды Conocybe и Pholiotina (Bolbitiaceae, Agaricales) в Свердловской области. Новости системики низких растений 52 (2): 387396. https://doi.org/10.31111/nsnr/2018.52.2.387

Шкараба Е.М., Переведенцева Л.Г., Мошкина Е.В. 1990. Микологические исследования в заповеднике Басеги. Эколого-флористические исследования по споровым растениям Урала . Свердловск: 93100.

Сопина А.А. 2001. Агарикоидные базидиомицеты горных лесов бассейнов р. Белой ( Северо-Западный Кавказ ). Кандидат Дисс. [Агарикоидные базидиомицеты горных лесов бассейна реки Белая (Северо-Западный Кавказ). Кандидат Дисс.]. Санкт-Петербург: 224 с. (На рус. Яз.).

Сорокин Н.1877. Beitrag zur Kenntniss der Cryptogamen Flora der Uralgegend. Hedwigia. Notizblatt für kryptogamische Studien nebst Repertorium für kryptogamische Literatur 3: 4044. (на нем.).

Степанова Н. Т., Сирко. В. 1977. К флоре агариковых грибов и гастеромицетов Урала. Микологические исследования на Урале . Свердловск: 51106..

Суслова Т.А., Чобадзе А. Б., Филиппов Д. А., Ширяева О. С., Левашов А. Н. 2013. Второе издание Красной книги Вологодской области: внесены изменения в перечень охраняемых и требуемых биологической борьбы видов растений и грибов. Фиторазнообразие Восточной Европы 7 (3): 93104. с англ. Аннотация.

Светашева Т.Ю. 2004. Агарикоидные базидиомицы Тульской области. канд. Дисс. [Агарикоидные базидиомицеты Тульской обл. Кандидат Дисс.]. Москва: 216 с. (На рус.).

Светашева Т.Ю., Арсланов С.Н., Большаков С.Ю., Волобуев С.В., Иванов А.И., Потапов К.О., Ежов О.Н., Саркина И.С., Химич Ю. Р., Боровичев Э.А., Ребриев Ю. А., Ивойлов А. В., Змитрович И. В. 2017. Новые виды для региональных микобиот России. 2. Отчет 2017. Микология и фитопатология 51 (6): 375389.

Сюзев П.В. 1901. Важнейшие болезни деревьев и кустарников от поражения их частей паразитными грибами на Урале. частей паразитическими грибами на Урале]. Записки Уральского общества любителей естествознания 22: 515.

Вестерхольт Дж. 2005. Род Hebeloma. Грибы Северной Европы 3. Tilst: 146 p.

Звягина Е.А., Байкалова А.С. 2017. Новые записи в списке биоразнообразия грибов Юганского заповедника (Западная Сибирь).

alexxlab

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *